Laporan Praktikum Ilmu Hijauan Makanan Ternak Gabungan

by sobah · May 25, 2016

LAPORAN PRAKTIKUM

ILMU HIJAUAN MAKANAN TERNAK

Disusun oleh :

Kelompok

XVIII

LABORATORIUM HIJAUAN MAKANAN TERNAK DAN PASTURA

BAGIAN NUTRISI DAN MAKANAN TERNAK

FAKULTAS PETERNAKAN

UNIVERSITAS GADJAH MADA

YOGYAKARTA

2015

LAPORAN PRAKTIKUM

ILMU HIJAUAN MAKANAN TERNAK

Disusun oleh :

Yuni Setiyawati

Amir Latif

Jonathan Wibowo

Nurus Sobah

Anisa Muslikhawati

PT/06473

PT/06534

PT/06560

PT/06587

PT/06616

Asisten Pendamping: Ellentika Damayanti

LABORATORIUM HIJAUAN MAKANAN TERNAK DAN PASTURA

BAGIAN NUTRISI DAN MAKANAN TERNAK

FAKULTAS PETERNAKAN

UNIVERSITAS GADJAH MADA

YOGYAKARTA

2015

HALAMAN PENGESAHAN

Laporan praktikum Ilmu Hijauan Makanan Ternak ini disusun guna memenuhi syarat dalam menempuh mata kuliah Ilmu Hijauan Makanan ternak di Fakultas Peternakan Universitas Gadjah Mada, Yogyakarta.

Laporan ini telah disetujui oleh asisten pendamping pada tanggal …. Mei 2015.

Yogyakarta, …. Mei 2015

Asisten Pendamping

Ellentika Damayanti

KATA PENGANTAR

Puji syukur kami panjatkan kehadirat Allah SWT karena berkat rahmat dan hidayah-Nya, saya dapat menyelesaikan praktikum dan menyusun laporan praktikum Ilmu Hijauan Makanan Ternak.

Laporan praktikum ini disusun sebagai syarat dan satu rangkaian dalam mengikuti mata kuliah Ilmu Hijauan Makanan Ternak sesuai dengan kurikulum yang telah ditetapkan di Fakultas Peternakan Universitas Gadjah Mada Yogyakarta. Penyusun mengucapkan terima kasih pada kesempatan kali ini kepada :

Dr. Ir. Ali Agus, DAA., DEA., selaku Dekan Fakultas Peternakan Universitas Gadjah Mada.
Ir. Djoko Soetrisno, M.Sc., Ir. Bambang Suhartanto, DEA., Bambang Suwignyo, S.Pt., MP., Ph.D., Nafiatul Umami, S.Pt., MP., Ph.D., dan Nilo Suseno, S.Si., M.Si., selaku dosen mata kuliah Ilmu Hijauan Makanan Ternak.
Seluruh asisten Laboratorium Hijauan Makanan Ternak dan Pastura yang telah membimbing praktikan.
Semua pihak yang telah membantu dalam menyelesaikan laporan ini.

Penyusun menyadari bahwa laporan ini masih jauh dari sempurna. Oleh karena itu segala kritik dan saran yang bersifat membangun kami harapkan demi kebaikan penyusunan laporan ini. Harapan penyusun semoga laporan ini dapat bermanfaat bagi pembaca umumnya dan penulis khususnya.

Yogyakarta, Mei 2015

Penyusun

DAFTAR ISI

Halaman

HALAMAN JUDUL……………………………………………………………………………… i

HALAMAN PENGESAHAN………………………………………………………………… ii

KATA PENGANTAR………………………………………………………………………….. iii

DAFTAR ISI………………………………………………………………………………………… iv

DAFTAR TABEL………………………………………………………………………………… vi

DAFTAR GAMBAR…………………………………………………………………………….. viii

DAFTAR GRAFIK………………………………………………………………………………. ix

DAFTAR LAMPIRAN………………………………………………………………………….. x

BAB I. PENDAHULUAN…………………………………………………………………….. 1

BAB II. IDENTIFIKASI RUMPUT DAN LEGUM…………………………………. 2

Tinjauan Pustaka……………………………………………………………………….. 2

Materi Metode……………………………………………………………………………… 5

Materi…………………………………………………………………………………. 5

Metode……………………………………………………………………………….. 5

Hasil dan Pembahasan……………………………………………………………… 6

Kesimpulan………………………………………………………………………………… 40

Daftar Pustaka……………………………………………………………………………. 41

Lampiran…………………………………………………………………………………….. 45

BAB III. IDENTIFIKASI BIJI………………………………………………………………… 48

Tinjauan Pustaka……………………………………………………………………….. 48

Identifikasi Biji……………………………………………………………. 48

Materi Metode……………………………………………………………………………… 50

Materi…………………………………………………………………………………. 50

Metode……………………………………………………………………………….. 50

Hasil dan Pembahasan……………………………………………………………… 51

Kesimpulan………………………………………………………………………………… 72

Daftar Pustaka……………………………………………………………………………. 73

Lampiran…………………………………………………………………………………….. 78

BAB IV. GERMINASI………………………………………………………………………….. 80

Tinjauan Pustaka……………………………………………………………………….. 80

Germinasi…………………………………………………………………… 80

Materi Metode……………………………………………………………………………… 84

Materi…………………………………………………………………………………. 84

Metode……………………………………………………………………………….. 84

Hasil dan Pembahasan……………………………………………………………… 86

Kesimpulan………………………………………………………………………………… 99

Daftar Pustaka……………………………………………………………………………. 100

Lampiran…………………………………………………………………………………….. 103

BAB V. PERTUMBUHAN TANAMAN……………………………………………….. 105

Tinjauan Pustaka……………………………………………………………………….. 105

Pertumbuhan Tanaman…………………………………………………….. 105

Materi Metode……………………………………………………………………………… 108

Materi…………………………………………………………………………………. 108

Metode……………………………………………………………………………….. 108

Hasil dan Pembahasan……………………………………………………………… 109

Kesimpulan………………………………………………………………………………… 117

Daftar Pustaka……………………………………………………………………………. 118

Lampiran…………………………………………………………………………………….. 120

BAB VI. KULTUR JARINGAN……………………………………………………………. 123

Tinjauan Pustaka……………………………………………………………………….. 123

Kultur Jaringan………………………………………………………………….. 123

Pengertian Kultur Jaringan……………………………………….. 123

Media Kultur Jaringan……………………………………………….. 125

Zat Pengukur Tumbuh………………………………………………. 126

Materi Metode……………………………………………………………………………… 130

Materi…………………………………………………………………………………. 130

Metode……………………………………………………………………………….. 130

Hasil dan Pembahasan……………………………………………………………… 131

Kesimpulan………………………………………………………………………………… 142

Daftar Pustaka……………………………………………………………………………. 143

Lampiran…………………………………………………………………………………….. 146

BAB VII. HERBARIUM……………………………………………………………………….. 148

Tinjauan Pustaka……………………………………………………………………….. 148

Definisi Herbarium…………………………………………………………….. 148

Manfaat Herbarium…………………………………………………………….. 148

Cara Pembuatan Herbarium………………………………………………. 149

Materi Metode……………………………………………………………………………… 151

Materi…………………………………………………………………………………. 151

Metode……………………………………………………………………………….. 151

Hasil dan Pembahasan……………………………………………………………… 152

Kesimpulan………………………………………………………………………………… 158

Daftar Pustaka……………………………………………………………………………. 159

LAMPIRAN………………………………………………………………………………………….. 160

DAFTAR TABEL

Halaman

Tabel 1.1. Identifikasi Rumput…………………………………………………………….. 6

Tabel 1.2. Identifikasi Legum………………………………………………………………. 29

Tabel 2.1 Identifikasi biji…………………………………………………………………….. 51

Tabel 3.1. Hari berkecambah dan keluarnya daun ……………………………. 86

Tabel 3.2. Tinggi biji tarum pada berbagai perlakuan…………………………. 89

Tabel 3.3. Tinggi biji sorgum……………………………………………………………….. 92

Tabel 3.4. Jumlah daun Indigofera arecta…………………………………………… 95

Tabel 3.5. Jumlah daun Sorghum bicolor L Moensch………………………… 97

Tabel 5.1.Tinggi tanaman……………………………………………………………………. 109

Tabel 5.2. Jumlah nodul tanaman………………………………………………………. 115

Tabel 6.1. Kontaminasi pada medium eksplan…………………………………… 134

Tabel 6.2. Produksi kalus…………………………………………………………………… 136

Tabel 6.3. Produksi tunas……………………………………………………………………. 139

DAFTAR GAMBAR

Halaman

Gambar 1.1. Rumput Gajah………………………………………………………………… 8

Gambar.1.2. Rumput Benggala cv Gotton…………………………………………… 9

Gambar 1.3. Rumput Chloris gayana………………………………………………….. 10

Gambar 1.4. Tebu……………………………………………………………………………….. 11

Gambar.1.5. Rumput Pangola…………………………………………………………….. 12

Gambar 1.6. Rumput Benggala cv Irian………………………………………………. 13

Gambar 1.7. Rumput Brachiaria brizantha………………………………………….. 14

Gambar.1.8. Rumput Paspalum notatum……………………………………………. 14

Gambar 1.9. Rumput Palisade……………………………………………………………. 15

Gambar.1.10. Rumput Brachiaria cv Mulata………………………………………… 16

Gambar 1.11. Rumput Paspalum atractum…………………………………………. 17

Gambar 1.12. Brachiaria humidicola…………………………………………………… 18

Gambar.1.13. Rumput Australia………………………………………………………….. 19

Gambar 1.14. Rumput Setaria splendida…………………………………………….. 20

Gambar 1.15. Jagung………………………………………………………………………….. 21

Gambar.1. 16. Rumput Kolonjono………………………………………………………. 22

Gambar 1.17.Rumput Pennisetum cv Mott………………………………………….. 23

Gambar 1.18. Rumput Gamba…………………………………………………………….. 24

Gambar.1.19. Rumput Pennisetum purpureum var Dwarf…………………… 24

Gambar 1.20. Rumput Ruzi………………………………………………………………… 25

Gambar 1.21. Rumput Kerbau…………………………………………………………….. 26

Gambar.1.22. Rumput Meksiko…………………………………………………………… 27

Gambar 1.23. Rumput Akar wangi………………………………………………………. 28

Gambar 1.24. Pohon Turi……………………………………………………………………. 30

Gambar.1.25. Kalopo…………………………………………………………………………… 31

Gambar 1.26. Stylosantes seabrama…………………………………………………… 32

Gambar 1.27. Pueraria triloba……………………………………………………………… 32

Gambar.1.28. Lamtoro Mini…………………………………………………………………. 33

Gambar 1.29.Lamtoro………………………………………………………………………….. 34

Gambar 1.30. Pohon Jati Putih…………………………………………………………… 35

Gambar.1.31. Kaliandra………………………………………………………………………. 36

Gambar 1.32. Bauhinia blakeana………………………………………………………… 37

Gambar 1.33. Gamal……………………………………………………………………………. 38

Gambar.1.34. Jayanti………………………………………………………………………….. 39

Gambar 2.1. Biji Acasia vilosa…………………………………………………………….. 52

Gambar.2.2. Biji Albizia falcatara java…………………………………………………. 53

Gambar 2.3. Biji Arachis hypogea……………………………………………………….. 54

Gambar. 2.4. Biji Bauhinia blakeana……………………………………………………. 55

Gambar.2.5. Biji Calopogonium mucunoides………………………………………. 55

Gambar 2.6. Biji Centrosema pubescens…………………………………………….. 56

Gambar 2.7. Biji Desmantus vergatus…………………………………………………. 57

Gambar.2.8. Bii Desmodium rensonii………………………………………………….. 58

Gambar 2.9. Biji Flemingi macrophylla……………………………………………….. 59

Gambar 2.10. Biji Glyricidia maculata………………………………………………….. 59

Gambar.2.11. Biji Glycine max…………………………………………………………….. 60

Gambar 2.12. Biji Gmelina arborea……………………………………………………… 61

Gambar 2.13. Biji Leucaena leucocephala………………………………………….. 62

Gambar.2.14. Biji Mucuna pruriensis…………………………………………………… 63

Gambar 2.15. Biji Oryza sativa…………………………………………………………….. 63

Gambar.2.16. Biji Phallaris canariensis……………………………………………….. 64

Gambar 2.17. Biji Pueraria phaseloides………………………………………………. 65

Gambar 2.18. Biji Sesbania glandifora………………………………………………… 65

Gambar.2.19. Biji Sorghum bicolor……………………………………………………… 66

Gambar 2.20. Biji Sorghum helepense………………………………………………… 67

Gambar 2.21. Biji Stylosantes cv jerano………………………………………………. 68

Gambar 2.22. Biji Teramnus labialis……………………………………………………. 68

Gambar.2.23. Biji Vigna sinensi…………………………………………………………… 69

Gambar 2.24. Biji Zea mays………………………………………………………………… 70

Gambar.7.1. Material herbarium tanaman Euchlaena mexicana………… 154

Gambar 7.2.Cara pemuatan herbarium………………………………………………. 155

DAFTAR GRAFIK

Halaman

Grafik.4.1.Perbandingan tinggi tanaman arecta…………………………………. 92

Grafik.4.2.Perbandingan tinggi tanaman sorgum bicolor……………………. 95

Grafik.4.3.Perbandingan jumlah daun berbagai perlakuan……………….. 96

Grafik.4.4.Perbandingan jumlah daun berbagai perlakuan……………….. 98

Grafik.5.1.Perbandingan tinggi tanaman……………………………………………. 111

Grafik.5.2.Perbandingan jumlah daun……………………………………………….. 114

DAFTAR LAMPIRAN

Halaman

Lampiran.1………………………………………………………………………………………….. 45

Lampiran.2………………………………………………………………………………………….. 78

Lampiran.3………………………………………………………………………………………….. 103

Lampiran.4………………………………………………………………………………………….. 120

Lampiran.5………………………………………………………………………………………….. 146

Lampiran 6………………………………………………………………………………………….. 150

BAB I

PENDAHULUAN

Peternakan di Indonesia mengalami beberapa masalah yang diantaranya yaitu makanan ternak yang belum bisa mencukupi kebutuhan dan rendahnya kualitas pakan yang ada di Indonesia. Produksi ternak dapat dinaikkan bila pengolahan ternak dan pakan ternak dilakukan dan disediakan dengn tepat. Kenaikan produksi ternak ditandai dengan penggunaan makanan ternak. Konsentrat yang tinggi jumlahnya dan ini hanya mungkin dilaksanakan apabila imbangan harga makanan dan harga produksi ternak berupa air ternak berupa air susu atau daging masih memadai. Produksi ternak makin turun apabila ternak dekat dengan ekuator. Usaha-usaha pertanian sangat menentukan berhasil tidaknya usaha peternakan, terutama dalam penyediaan tanaman bahan pangan cukup dan kualitas tinggi yang menunjang produksi ternak yang tinggi.

Meningkatnya kesadaran masyarakat akan pentingnya protein hewani bagi tubuh disertai perbaikan sosial ekonomi masyarakat menyebabkan permintaan bahan pangan yang berasal dari ternak meningkat, sehingga menuntut peningkatan produksi dibidang peternakan. Peningkatan permintaan produksi di bidang peternakan ini arus diimbangi dengan mutu kualitas pakan. Kualitas pakan merupakan salah satu faktor utama yang mempengaruhi baik tidaknya produksi ternak.

Praktikum HIjauan Makanan Ternak ini bertujuan agar praktikan dapat mengenal dan membedakan macam-macam rumput dan legume berdasarkan spesifikasinya sehingga dapat mengetahui jenis pakan hijauan yang berkualitas tinggi yang dapat meningkatkan produktivitas suatu ternak, dapat membedakan sifat karakteristik dan beberapa macam biji, dapat membuat kultur jaringan, dan pembuatan herbarium.

BAB I

IDENTIFIKASI RUMPUT DAN LEGUME

Tinjauan Pustaka

Hijauan makanan ternak merupakan makanan pokok bagi hewan memamah biak diantaranya adalah ternak sapi, kambing, dan kerbau (Pramana et al., 2010). Hijauan yang hendak ditanam tentu saja menguntungkan sehingga harus memenuhi produktivitas persatuan luas yang tinggi, nilai palabilitas yang baik, serta beradaptasi baik dengan lingkungan.Sebagai contoh jenis rumput potong yang memilki palabilitas yang baik adalah rumput gajah (Pennistum purpureum), Setaria sphacelata, Panicum maximum, rumput gembala misalnya African Star Grass (Aak, 2003).

Hijauan pakan adalah bahan makanan yang mengandung serat kasar 18% atau lebih (dihitung dari bahan kering). Angka batasan ini hanya sekedar patokan, karena di dalam prakteknya sering didapatkan hal-hal yang berada di luar batasan ini.Kualitas hijauan sangat bervariasi yang disebabkan oleh beberapa perbedaan dalam spesies, umur, kesuburan tanah, sumber-sumber air dan lain sebagainya. Daerah Indonesia ataupun di daerah tropis lainnya belum diperoleh keterangan secara pasti tentang adanya suatu hijauan yang menonjol kualitasnya, khususnya untuk ternak kuda. Penurunan penanaman hijauan ini antara lain disebabkan menurunnya ternak kuda (termasuk keledai), di samping kegemaran peternak terhadap rumput lainnya (Hanson et al., 2006).

Rumput adalah tanaman yang paling efisien untuk merubah sinar matahari menjadi biomassa dan pada saat yang sama mengkonversi karbondioksida menjadi oksigen. Ternak ruminansia mampu mengubah biomassa ini, yang umumnya tidak dapat dicerna oleh manusia, menjadi protein berkualitas tinggi melalui aktifitas mikroorganisme dalam rumen mereka. Rumput-rumput memberikan tutupan tanah yang baik untuk mengurangi erosi sementara akar yang sangat halus akan membentuk bahan organik dan membantu penyusupan air ke dalam tanah (Sutaryono et al., 2002).

Gramineae adalah tanaman kosmopolis. Mereka dapat berada di dataran rendah hingga dataran tinggi, di daerah yang basah hingga yang kering, di rawa–rawa yang berdiri sepanjang tahun maupun musiman dan dalam hutan–hutan. Penyebarluasan gramineae yang dasyat disebabkan karena mudah beradaptasi dengan iklim dan lingkungan, mudah bersaing dengan lain–lain tumbuhan, mudah tumbuh kembali dan dapat berkembang biak melalui biji (Rismunandar, 2009).

Legum merupakan tanaman yang cocok untuk makanan ternak terutama sebagai makanan penambah konsentrat. Sebagian besar legum ditanam guna memenuhi gizi dari ternak tersebut. Salah satu legum yang digunakan sebagai penambah konsentrat adalah kacang kedelai. Kedelai merupakan salah satu sumber protein nabati dengan kandungan 39%, dan 2% dari seluruh rakyat indonesia memperoleh sumber kalori dari kedelai, kedelai telah menjadi bagian makanan sehari-hari bangsa Indonesia selama lebih dari 200 tahun dan diakui mempunyai nilai gizi tinggi oleh dunia internasional (Sutarya et al., 1995).

Tanaman legum di daerah tropis berdasarkan lingkungannya dibedakan menjadi beberapa macam. Di lingkungan tropis basah banyak ditumbuhi oleh legum jenis kalopo, sentrsoma dan dismodium. Di lingkungan tergenang sementara terdapat rumput spesies Pahaseolus lathyroides. Di lingkungan tropis kering terdapat rumput-rumputan jenis Stylosantes, Dolichos, Cajanus, Medicago dan Trifolium yang mempunyai sifat tumbuh annual. Sedangkan di daerah pegunungan terdapat jenis rumput Trifolium, jenis ini biasanya memerlukan air yang cukup banyak (Reksohadiprodjo, 1995).

Secara umum legum mempunyai ciri mempunyai bintil akar yang dapat berfungsi sebagai penyubur tanah. Daunnya berbentuk kecil-kecil dan bersirip tunggal, buahnya termasuk buah polong. Bunganya berbentuk kupu-kupu, pada legum spesies pohon biasanya berakar tunggang, sedangkan legum yang bukan spesies pohon berakar serabut. Mampu mengikat nitrogen bebas dari udara, legum tropik biasanya bersifat perennial (hidup lebih dari satu tahun). Sifat tumbuhnya merayap dan membelit batang-batang dapat mengeluarkan akar dari tiap ruas batangnya. Ada juga spesies legum yang tumbuh tegak. Beberapa spesies legum yang biasa digunakan sebagai penutup tanah diantaranya adalah Centrosema pubescens, Calopogonium mucunoides, Pueraria javanica, Crotalaria juncea, dan Crotalaria usaramoensis (Kariada et al., 2000).

Leguminosa sering digunakan oleh peternak untuk tujuan tertentu, disamping sebagai sumber zat–zat pakan. Apabila dicampur dengan graminae akan baik karena merupakan gabungan antara bahan pakan yang kaya akan zat–zat pakan dan sifat mengisi dari graminae. Legum mengandung serat yang dibutuhkan ternak dan juga protein dan zat hijau (Parakkasi, 2009).

Materi dan Metode

Materi

Alat. Alat yang digunakan dalam praktikum Identifikasi Rumput dan Legum antara lain, buku, kamera, dan alat tulis.

Bahan. Bahan yang digunakan dalam praktikum Identifikasi Rumput dan Legum adalah rumput dan legum yang ada di kebun koleksi laboratorium Ilmu Hijauan Makanan Ternak dan Pastura.

Metode

Metode yang digunakan dalam praktikum Identifikasi Rumput dan Legumdengan mempelajari macam-macam tanaman pakan lengkap dengan bagian-bagiannya (akar, batang, daun dan bunga) dan ciri-ciri yang dimiliki setiap tanaman.Hasil praktikum ditulis di lembar kerja.

Hasil dan Pembahasan

Identifikasi rumput dan legum bertujuan untuk mengetahui perbedaan dan ciri-ciri spesifik setiap tanaman legum dan rumput. Bagian yang merupakan ciri khusus rumput yaitu auricle, colar, dan ligule. Bagian yang merupakan ciri khusus legum yaitu stipul, pteol, pteolul.

Rumput

Berdasarkan praktikum diperoleh hasil identifikasi tanaman rumput sebagai berikut:

Tabel 1. Identifikasi rumput

Nama Latin	Nama umum	Tipe
Nama Latin	Nama umum	Tumbuh	Bunga
Andropogon gayanus	Rumput gamba	Erect	Raceme Sd
Brachiaria brizantha	Rumput Palisade	Decumben	Raceme
Brachiaria decumbens	Rumput palisade	Decumben	Raceme
Brachiaria humidicola		Procumben
Brachiaria ruziziensis	Rumput ruzi	Procumben	Raceme
Chloris gayana	Rumput rodes	Erect	Raceme
Digitaria decumbens	Pangola	Decumben	Raceme
Euchlaena mexicana	Rumput mexico	Erect
Hypharrenia rufa	Rumput jaragua	Erect	Raceme
Irian grass (Sorghum sudannensis)	Rumput sudan	Erect	Raceme
Panicum maximum	Rumput benggala	Erect	Panicle

Panicum maximum cv. Cisarua	Rumput benggala	Semi Erect	Panicle
Nama Latin	Nama umum	Tipe
Nama Latin	Nama umum	Tumbuh	Bunga
Panicum maximum var. Gotton		Erect	Panicle
Panicum maximum var. Hamil	Benggala	Semi Erect	Panicle
Panicum muticum	Rumput kolonjono	Decumben
Paspalum atractum	Rumput paspalum	Semi Erect	Raceme
Paspalum dilatatum	Rumput Australia	Semi Erect
Paspalum notatum	Rumput Bahia	Semi Erect	Raceme
Paspalum plicatulum	Rumput paspalum	Erect	Raceme
Pennisetum purpupoides	Rumput gajah	Erect
Pennisetum purpureum	Rumput gajah	Erect	Spike
Pennisetum purpureum cv. Gajah		Erect	Spike
Pennisetum purpureum cv. Mott	Rumput odot	Erect	Raceme
Pennisetum purpureum var. Dwarf	Rumput gajah	Erect	Spike
Pennisetum purpureum var. Exchina	Rumput gajah var. Exchina	Erect	Spike
Setaria splendida	Rumput setaria	Erect	Raceme
Vetiveria zizanoides	Akar wangi	Erect	Raceme

Rumput gajah (Pennisetum purpureum). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput gajah bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian sejajar, permukaan daun halus. Menurut Sanderson dan Paul (2008), Pennisetum purpureum adalah tanaman yang dapat tumbuh di daerah dengan minimal atau tanpa tambahan nutrien, sehingga dapat memperbaiki kondisi tanah yang rusak akibat erosi, juga dapat hidup pada tanah kritis dimana tanaman lain relatif tidak dapat tumbuh dengan. Menurut Yahya (2002), rumput gajah secara umum merupakan tanaman tahunan yang berdiri tegak, berakar dalam, tinggi batang mencapai 2 sampai 4 meter, tumbuh membentuk rumpun, pelepah daun gundul hingga garis berbulu pendek, helai daun bergaris dengan dasar yang lebar, ujungnya runcing.Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Nurhayati et al., (2012), Pennisetum purpureum cv. gajah tumbuh membentuk rumpun. Perakarannya cukup dalam, rhizoma atau rimpang pendek. Memiliki batang yang tegak, berbuku dan keras bila sudah tua. Daunnya keras dan berbulu serta memiliki bunga yang berbentuk tandan (seperti es lilin).

Gambar 1.1.rumput gajah

Rumput Benggala (Pannicum maximum var. Gotton). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput benggala bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian sejajar, tipe bunga open panicle , jumlah node 4 sampai 5. Menurut Pramana et al., (2010), rumput benggala berasal dari Afrika tropik dan subtropik. Ciri-cirinya bersifat perennial atau tanaman tahunan, batang tegak, kuat dan membentuk rumpun, akarnya membentuk serabut dalam dan mempunyai lidah daun yang berbulu. Menurut Sumarsono (2007),Pannicum maximum tumbuh pada daerah daratan rendah sampai pegunungan, dapat bertoleransi dengan berbagai jenis tanah, tahan naungan, responsif terhadap pupuk nitrogen.Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur. Menurut Sutedi et al., (2002), Panicum maximum berasal dari Afrika. Panicum maximum diintroduksikan ke berbagai negara di dunia. Beberapa jenis kultivar Panicum maximum adalah Panicum maximum cv Natsuyutaka, Panicum maximum cv Purple guinea, Panicum maximum cv Hamil, Panicum maximum cv Gotton, Panicum maximum cv Natsukaze, Panicum maximum cv Rivesdale, Panicum maximum cv T 58 dan Panicum maximum cv Petric.

Gambar 1.2.rumput benggala cv gotton

Chloris gayana. Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput Chloris gayana bertipe tumbuh erect, tipe daun menyirip, tipe bunga digited panicle , jumlah node 4 sampai 5. Menurut Sutedi et al., (2004), Chloris gayana merupakan rumput asli daerah Afrika Selatan dan Timur yang meluas ke Afrika Barat. Tanaman ini mempunyai umur yang panjang dapat mencapai tinggi 1 sampai 1,5 m. Batangnya bercabang-cabang dan lebat berkembang pesat dengan stolon. Helai daun halus, tidak berbulu dan panjang sekitar 50 cm dengan lebar 0,5 sampai 1,0 cm. Tanaman ini berbunga, dapat tumbuh baik pada setiap jenis tanah namun responsif terhadap tanah yang subur dengan pH 6,5 sampai 7,0. Rumput ini termasuk jenis rumput yang tahan kering. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur

Menurut Anonim (2014), rumput rodes atau bisa juga disebut rumput Chloris gayana merupakan jenis tanaman rumput yang tergolong unggul dan sifatnya tumbuh sepanjang tahun. Keunggulan rumput ini mampu bertahan hidup di daerah yang kering, Sehingga dapat dijadikan alternatif dalam memenuhi ketersediaan rumput dikala musim kemarau.Rumput ini berasal dari dataran Afrika Selatan dan Afrika Timur yang kemudian menyebar ke beberapa daerah tropis salah satunya Indonesia. Setidaknya ada 3 jeni dan kultivar rumput Rhodes yakni C. gayana cv. Pioneer, C. gayana cv Samford, dan C. gayana cv katambora. Ke 3 jenis tersebut dapat berproduksi rumput segar mencapai 50 ton tiap tahunnya. Chloris gayana disebut juga rumput rhodes, tumbuh 57 sampai 70 hari

Menurut Siregar (1996), Chloris gayana dikenal dengan sebutan rumput rhodes yang merupakan rumput asli Afrika tropis yang penyebarannya mencapai daerah tropis dan subtropis. Produksinya mencapai 5 ton bk/ha dengan pemupukan. Reksohadiprodjo (1995) menjelaskan bahwa tanaman ini berumur panjang, membentuk hamparan yang mencapai tinggi 1,5 m. Helai daun halus tak berbulu dan panjang sekitar 50 cm dengan lebar 0,5 sampai 1 cm. Chloris gayana merupakan rumput yang tahan kering dan sangat toleran terhadap api, juga merupakan rumput yang baik untuk padang rumput rotasi di daerah tropis, palatabel dan tahan terhadap penggembalaan serta tahan injakan. Perbungaan berupa digitate atau subdigitate yang teridir dari 6 sampai 15 gugus bunga.

Gambar 1.3. Rumput Chloris gayana

Tebu (Saccharum officinarum). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa tebu bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian sejajar, tipe bunga panicle. Menurut Wijayanti (2008), tanaman tebu mempunyai batang yang tinggi, tidak bercabang dan tumbuh tegak. Tanaman yang tumbuh baik, tinggi batangnya dapat mencapai 3 sampai 5 meter atau lebih.Pada batang terdapat lapisan lilin yang berwarna putih dan keabu-abuan.Lapisan ini banyak terdapat sewaktu batang masih muda.Ruas-ruas batang dibatasi oleh buku-buku yang merupakan tempat duduk daun.Pada ketiak daun terdapat sebuah kuncup yang biasa disebut “mata tunas”.Bentuk ruas batang dan warna batang tebu yang bervariasi merupakan salah satu ciri dalam pengenalan varietas tebu. Hasil praktikum telah sesuai denga

Gambar 1.4.tebu

Rumput pangola (Digitaria decumben). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput pangola bertipe tumbuh semi erect, tipe daun helaian sejajar. Menurut Anonim (2014), rumput pangola merupakan tanaman hijauan makanan ternak sifatnya perennial (menahun) yang berasal dari Afrika Selatan yang beriklim tropika dan menyebar ke negara-negara tropis maupun subtropis seperti Indonesia. Rumput pangola sangat cocok ditanam pada lahan yang tingkat kesuburannya sangat rendah seperti tanah berpasir dan berliat.Tahan terhadap kekeringan sehingga dapat dijadikan alternative sebagai sumber hijauan dikala musim kemarau.Cocok digunakan sebagai tanaman pada lahan penggembalaan karena tahan terhadap renggutan dan mudah tumbuh kembali meskipun pertumbuhannya tergolong lambat.Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Nurhayati et al., (2012), Digitaria decumbens merupakan tanaman tahunan yang mempunyai perakaran yang kuat berbentuk stolon yang panjang serta memiliki buku-buku pada stolonnya. Tumbuh membentuk hamparan yang tidak rapat, daun halus agak berbulu dan memiliki bunga berbentuk mayang jari. Menurut Reksohadiprodjo (1995), bahwa rumput ini tumbuh rendah, berdaun lebat, membentuk stolon, dan berakar di tiap buku stolon. Tingginya dapat mencapai 60 sampai 120 cm dan batangnya tidak berbulu.

Gambar 1.5.rumput pangola

Rumput benggala (Panicum maximum CV. Irian).Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput benggala bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian sejajar, tipe bunga open panicle. Menurut Anonim (2014), rumput Benggala adalah jenis rumput yang banyak dimanfaatkan sebagai pakan ternak yang memiliki komposisi nutrisi yang baik. Asal rumput benggala yakni dari Afrika tepatnya di Zimbabwe yang kemudian diberi nama latin Panicum maximum. Rumput ini dapat tumbuh baik di semua jenis tanah dengan curah hujan lebih dari 760 mm/tahun.Kemampuan produksinya dapat mencapai 60 ton /ha per tahun.Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Gambar 1.6.rumput benggala cv irian

Brachiaria brizantha. Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa Brachiaria brizantha bertipe tumbuh erect, bertipe daun helaian sejajar dan mempunyai bulu halus, dan bertipe bunga raceme, selain itu terdapat warna ungu pada batang dan daunnya.Menurut Parakkasi (1995), Brachiaria brizantha mempunyai tipe tumbuh erect, mempunyai ligule yang berwarna putih dan tidak berbulu, serta auricle yang juga tidak berbulu.Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur. Menurut Miles (1996), Brachiaria brizantha merupakan jenis tanaman tahunan dan memiliki sedikit rhizoma yang pendek dan batang tegak atau sedikit menjalar dengan tinggi 60 sampai 150 cm. Rumput ini tumbuh di daerah tropik yang lembab dan sangat responsif terhadap peningkatan kesuburan tanah. Brachiaria brizantha memiliki ciri-ciri yang mirip dengan Brachiaria decumbens sehingga mungkin sulit dibedakan.

Gambar 1.7.rumput Brachiaria brizantha

Paspalum notatum. Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput Paspalum notatum bertipe tumbuh semi erect, tipe daun helaian sejajar, tipe bunga raceme.Menurut Newman et al., (2013), Paspalum notatum merupakan rumput-rumput berumbai dengan daun yang ramai di dasar dan dangkal. Tanaman ini dapat tumbuh 30 hingga 50 cm tinggi.Reproduksi adalah dengan biji, dan menyebar secara vegetatif dengan singkat.Secara genetik, ada dua jenis atau dua tingkat ploidi ditemukan pada spesies ini yang dibudidayakan yaitu diploid dan tetraploids. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Gambar 1.8.rumput Paspalum notatum

Rumput palisade (Brachiaria decumben). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput palisade bertipe tumbuh procumben, tipe daun helaian sejajar, tipe bunga digited panicle. Menurut Anonim (2014), rumput Brachiaria decumbent merupakan rumput yang berasal dari Afrika Timur. Biasa ditanaman untuk padang penggembalaan sebagai pakan ternak. Terkadang juga sengaja di tanam untuk dilakukan pemotongan seperti halnya rumput gajah dan rumput raja. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Miles (1996), Brachiaria decumben tumbuh rendah, tegak atau menjalar. Brachiaria decumben membentuk rizoma dan merupakan tanaman tahunan yang berstolon dengan daun berbulu sedang dan berwarna hijau terang, memiliki panjang 5 cm sampai 25 cm. Daun tumbuh dari stolon yang merambat yang berakar pada buku-bukunya. Brachiaria decumben memiliki bulu lebih halus dibandingkan dengan Brachiaria brizantha.

Gambar 1.9.rumput palisade

Brachiaria decumbent CV. Mulata. Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput palisade cultivar mulata bertipe tumbuh procumben, tipe daun helaian sejajar, tipe bunga digited panicle. Menurut Anonim (2014), rumput Brachiaria decumbent disebut juga rumput signal. Rumput signal sangat cocok ditanam di daerah beriklim tropis dan sub-tropis dengan ketinggian mencapai 1750 meter dpl, dan kondisi hujan berkisar 1000 sampai 1500 mm/ tahun. Di Indonesia rumput signal sangat mudah ditemukan diantaranya di pinggiran jalan, selokan, lapangan, dan dipinggiran sawah. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Gambar 1.10. Brachiaria cv Mulata

Paspalum atractum. Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput Paspalum atractum bertipe tumbuh decumben, tipe daun helaian sejajar, tipe bunga digited panicle. Menurut Anonim (2014), total produksi bahan kering hijauan rumput Paspalum dari 5 kali panen (setahun) adalah 156t/ha. Rumput ini menghasilkan biomas yang tinggi setara dengan rumput gajah dan sangatdisukai oleh ternak. Petani juga sangat menyukainya dan mudah memanennya karena rumputini tumbuh tegak dan tidak berbulu. Rumput ini dapat tumbuh pada lahan yang terbuka maupun yang ternaungi, pertumbuhan kembali cepat, produksi daun tinggi, mudah dipanen, disukai ternak, tahan penggembalaan, dan tepinya tajam.Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Parakkasi (1995), tanaman ini mempunyai ciri-ciri sebagai berikut, tipe tumbuhnya erect dan berumpun perennial, mempunyai pannicle dengan 8 sampai 13 racemes, tiap raceme mempunyai dua baris spikelet, ujung daun dari tanaman ini berbulu. Rumput ini tumbuh pada tanah yang bervariasi luas dengan curah hujan sedang sampai tinggi di daerah tropik dan subtropik.

Gambar 1.11.Paspalum atractum

Brachiaria humidicola. Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput Brachiaria humidicola bertipe tumbuh semi erect, tipe daun helaian sejajar, tipe bunga raceme, tumbuh secara anual. Menurut Miles (1996), Brachiaria humidicola merupakan tanaman rumput tahunan yang mempunnyai banyak stolon dan rizoma dan membentuk lapisan penutup tanah yang padat. Batang vegetatif prostrate pada bagian bawah dimana dibentuk akar dari buku yang lebih bawah. Helai daun lebar 5 sampai 16 mm, dan panjang sampai 25 cm. Tangkai bunga tegak, tinggi 20 sampai 60 cm. Inflorescence panjang 7 sampai 12 cm, dengan 2 sampai 5 tandan, kelompok bunga berbulu. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Ginting dan Andi (2007), Brachiaria humidicola merupakan rumput yang memiliki toleransi baik terhadap naungan, secara kualitatif juga memiliki potensi yang baik sebagai hijauan pakan untuk ternak kambing. Koefisien cerna beberapa unsur nutrisi yang penting bagi ternak seperti BO, protein kasar dan energi kasar berada pada kisaran sedang sampai tinggi, sehingga cocok sebagai penyedia nutrisi bagi kebutuhan hidup pokok maupun produksi.

Gambar 1.12.Brachiaria humidicola

Rumput Australia (Paspalum dilatatum). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput australlia bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian, tipe bunga spike. Menurut Rahardjo (2002), Paspalum dilatatum berasal dari Argentina (Amerika Selatan), masuk ke benua Australia pada tahun 1870 dan akhirnya meluas menjadi rumput benua Australia. Bahan penanaman adalah pols. Dapat tumbuh pada struktur tanah sedang sampai berat.Tetapi yang paling baik adalah pada tanah berat yang basah dan subur.Ketinggian 0 sampai 2.000 m (dataran rendah sampai pegunungan). Curah hujan tak kurang 900 sampai 1.200 mm/tahun. Termasuk rumput berumur panjang, tumbuh tegak yang bisa mencapai tinggi 60 sampai 150 cm, berdaun rimbun yang berwarna hijau tua. Tanaman ini toleran terhadap kekeringan karena sistem perakarannya luas dan dalam serta tahan genangan air. Rumput ini merupakan rumput gembala yang baik, sebab tahan injak dan renggut serta merupakan rumput yang palatable (enak) dan banyak nilai gizinya.Sebagai rumput potong, rata-rata produksinya bisa mencapai 50 sampai 70 ton per tahun/Ha. Sehabis dilakukan pemotongan, rumput ini pertumbuhannya kembali sangat cepat. Sebagai rumput gembala ketinggian harus dipertahankan sekitar 30 cm. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Gambar 1.13.rumput australia

Setaria splendid dan Setaria lampungensis. Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput Setaria splendida bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian. Rumput Setaria splendida bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian. Menurut Anonim (2014), rumput Setaria merupakan jenis rumput unggul yang memiliki kualitas nutrisi yang tinggi. Rumput setaria berasal dari Afrika tropik dan memiliki siklus hidup parenial. Sering disebut dengan rumput Golden Timothy atau Setaria spacelata. Setidaknya terdapat sekitar 100 spesies rumput setaria salah satunya adalah S. sphacelata dan var. splendida. Mudah tumbuh di daerah dengan ketinggian antara 1000 sampai 3000 meter dpl dengan curah hujan sekitar 750 sampai 1000 mm Produksinya dapat mencapai 100 ton/hektar/tahun. Keunggulan rumput setaria adalah saat musim penghujan tahan terhadap genangan air, sedangkan saat musim kemarau tahan terhadap kekeringan, sehingga dapat menjadi sumber pakan dikala musim kemarau. Sedangkan kekurangannya adalah dapat terserang penyakit daun khususnya di daerah yang beiklim basah, sehingga berpengaruh terhadap produksi hijauan. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Gambar 1.14. Rumput Setaria splendida

Tanaman jagung (Zea mays). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa tanaman jagung bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian, mempunyai bunga jantan dan betina. Menurut Chandra (2013), akar jagung tergolong akar serabut yang dapat mencapai kedalaman 8 m meskipun sebagian besar berada pada kisaran 2 m. Batang jagung tegak dan mudah terlihat, sebagaimana sorgum dan tebu, namun tidak seperti padi atau gandum. Terdapat mutan yang batangnya tidak tumbuh pesat sehingga tanaman berbentuk roset. Batang beruas-ruas. Ruas terbungkus pelepah daun yang muncul dari buku. Batang jagung cukup kokoh namun tidak banyak mengandung lignin. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Daun jagung adalah daun sempurna. Bentuk daunnya memanjang, antara pelepah dan helai daun terdapat ligula. Tulang daun sejajar dengan ibu tulang daun. Permukaan daun ada yang licin dan ada yang berambut. Jagung memiliki bunga jantandan bunga betina yang terpisah (diklin) dalam satu tanaman (monoecious). Tongkol tumbuh dari buku, di antara batang dan pelepah daun. Pada umumnya, satu tanaman hanya dapat menghasilkan satu tongkol produktif meskipun memiliki sejumlah bunga betina. Buah Jagung siap panen. Beberapa varietas unggul dapat menghasilkan lebih dari satu tongkol produktif, dan disebut sebagai varietas prolifik (Chandra, 2013). Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Jagung yang ditanam pada musim labuhan (awal musim hujan) biasanya kurang mendapatkan air yang cukup pada awal pertumbuhannya dan pada saat pengisian biji mengalami kebanjiran. Penanaman jagung pada awal musim kemarau biasanya mengalami kekeringan pada saat berbunga. Sedangkan jagung yang diusahakan pada musim kemarau hampir selalu menderita kekeringan selama pertumbuhan (Mahyuddin, 2006).

Gambar 1.15. jagung

Rumput kolonjono (Panicum muticum). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput kolonjono bertipe tumbuh semi erect, tipe daun helaian sejajar. Menurut Anonim (2014), rumput kalanjana (kolonjono) berasal dari Afrikasi Selatan. Rumput ini hasil kawin silang antara rumput gajah dengan rumput Pennisetum tydoides. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Suharni (2004), Panicum muticum atau rumput potongan atau rumput gembala, tumbuh tegak membentuk rumpun lebat setinggi 60 sampai 90 cm. Tanaman tahunan, menjalar dengan stolon yang panjang. Dari setiap buku stolon tumbuh tunas atau anakan dengan daun yang lebar tetapi pendek dan berbulu halus. Malai terdiri dari 10 sampai 20 tandan kadang-kadang tunggal atau berpasangan.

Gambar 1.16.kolonjono

Pennisetum purpureum CV. Mott. Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput Pennisetum purpureum cv motz bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian sejajar, daun mempunyai gerigi. Menurut Lasamadi et al., (2013), Pennisetum purpureum cv. Mott. Kultivar ini memiliki karakteristik perbandingan rasio daun yang tinggi dibandingkan batang. Berkualitas nutrisi tinggi pada berbagai tingkat usia dibandingkan jenis rumput tropis lainnya. Tahan kekeringan, dan hanya bisa di propagasi melalui metoda vegetatif. Pennisetum purpureum cv. Mott merupakan salah satu rumput unggul yang berasal dari Philipina dimana rumput ini mempunyai produksi yang cukup tinggi. Selain itu menghasilkan banyak anakan, mempunyai akar kuat, batang yang tidak keras dan mempunyai ruas- ruas daun yang banyak serta struktur daun yang muda sehingga sangat disukai oleh ternak. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Gambar 1.17. Rumput Pennisetum purpureum cv. Mott

Rumput gamba (Andropogon gayanus). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput gamba bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian, tipe bunga raceme. Menurut Anonim (2014), Andropogon gayanus adalah sejenis rumput perennial Afrika yang merupakan sebuah contoh spesies rumput yang berguna. Persebarannya meliputi Sudan bagian utara hingga Sahel. Rumput ini memeiliki beberapa kelebihan yang menjadikannya varietas yang sesuai untuk dijadikan penahan hidup dan penutup tanah.Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Rukmana (2005), rumput tersebut terkenal juga dengan nama tanaman ”gamba”. Tipe tumbuhnya adalah erect, batangnya berwarna putih, tipe daun berwarna ungu dan bergerigi. Tidak mempunyai bunga. Daun dibagian yang melingkari batang, helaian daun, lidah daun yang berada di batas helaian daun batang atas tegak, dengan permukaan daun yang halus.

Gambar 1.18.rumput gamba

Pennisetum purpureum var. Dwarf. Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput gajah varietas dwarf bertipe tumbuh semi erect, tipe daun helaian sejajar. Menurut Polakitan dan Kairupan (2007), rumput gajah dwarf memiliki kemampuan menghasilkan biomasa yang tinggi dan kualitas nutrisi yang tinggi. Menurut Suatna (2003), rumput gajah dwarf mempunyai kandungan protein 10 sampai 15%.Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur. Menurut Nyambati et al (2010), rumput Pennisetum purpureum dwarf di daerah Georgia dapat mencapai ketinggian 1,5 meter.

Gambar 1.19.Rumput Pennisetum purpureum var. dwarf

Rumput ruzi (Brachiaria ruziziensis). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput ruzi bertipe tumbuh procumben, tipe daun helaian sejajar, tipe bunga raceme. Menurut Anonim (2014), rumput ruzi adalah rumput untuk dataran rendah sampai ketinggian 2000 m pada daerah tropis yang basah, dengan rata-rata curah hujan minimum 1200 mm. Dapat bertahan musim kering selama 4 bulan tetapi akan mati pada kekeringan yang panjang. Tidak tahan terhadap genangan dan tumbuh subur pada tanah berpengairan baik. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Reksohadiprojo (1995), rumput Brachiaria ruziziensis berbentuk kaku, membentuk rhizoma, kumpulan daun lebat dan sedikit tegak, memiliki tipe daun yang sejajar, tipe pertumbuhan erect, dan tipe bunga raceme. Ciri-ciri dari Brachiaria ruziziensis adalah tipe tanaman tahunan, merambat dengan rhizoma pendek, batang berongga tumbuh merambat dari pucuk buku-buku.

Gambar 1.20.rumput ruzi

Rumput kerbau (Stenotaphrum secundatum). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput kerbau bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian sejajar. Menurut Anonim (2014), rumput kerbau merupakan jenis hijauan pakan ternak yang berasal dari Amerika dan Asia Tenggara. Di Indonesia persedia sangat melimpah yang banyak digunakan sebagai pakan ternak terutama kerbau, sehingga sering juga disebut rumput kerbau. Paitan tumbuh dengan baik di daerah dengan ketinggian hingga 1700 meter dpl. Sering ditemukan di lapangan, dibawah pohon. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Gambar 1.21.rumput kerbau

Rumput meksiko (Euchlaena mexicana). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput meksiko bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian sejajar, daun lebar. Menurut Anonim (2014), rumput meksiko masuk ke Indonesia sejak tahun 1878 yang dibawa ke pulau Jawa. Rumput ini merupakan salah satu rumput unggul yang produksi per tahunnya dapat mencapai 120 ton atau sekitar 15 ton per hektar. Tanaman rumput meksiko mudah tumbuh diberbagai jenis tanah lembab dan subur dengan ketinggian hingga 1200 meter dpl.curah hujan sekitar 1000 mm/per tahun. Sedangkan pada musim kemarau rumput ini sulit tumbuh karena memang tidak tahan terhadap kekeringan.Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Reksohadiprodjo (1995), rumput ini kaku, annual, morfologinya seperti tanaman jagung, berasal dari Amerika Tengah dan Mexico, sesuai hidup di daerah tropik yang basah dan sub tropik yang tanahnya berair, hasil hijauannya lebih sedikit di daerah-daerah yang kering dan kurang subur disbanding tanaman jagung dan sorghum.

Gambar 1.22.rumput meksiko

Rumput akar wangi (Vetiverra zizanoides). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput akar wangi bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian sejajar. Menurut Litbang (2007), akar wangi merupakan tanaman rumput yang tumbuh tegak hingga dapat mencapai tinggi 1 hingga 2,5 meter. Akar wangi memiliki batang yang tumbuh tegak namun lunak. Warna batangnya putih, dengan ruas-ruas di sekeliling batang. Daun akar wangi berbentuk pita, dengan warna hijau. Bunga tanaman berkhasiat ini bentuknya menyerupai padi namun berduri dan berwarna putih kotor. Sedangkan bunga tanaman obat ini tumbuh diujung batang dan memiliki bentuk bulir. Tanaman akar wangi memiliki akar serabut dan berwarna kuning. Salah satu ciri yang menjadikan tanaman ini dinamakan akar wangi adalah karena akarnya memang mengeluarkan bau wangi yang cukup pekat. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Reksohadiprodjo (1995), ciri-ciri rumput akar wangi antara lain tipe bunga panicle tumbuhan ini bentuknya seperti serat dan tipe tumbuh erect. Tepi daun bergerigi dan tepi daun kecil, panjang serta kaku. Daun bagian dalam berwarna putih garis-garis dan mempunyai batang semu artinya terdapat batang tapi sangat kecil.

Gambar 1.23.rumput akar wangi

Rumput sudan (Irian grass). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa rumput sudan bertipe tumbuh erect, tipe daun helaian sejajar, tipe bunga panicle. Menurut Anonim (2014), rumput sudan berasal dari Sudan, bahan penanaman adalah pols dan biji. Dapat hidup pada jenis tanah ringan, sedang sampai berat, serta tidak terlalu basah. Ketinggian 0-900 mm/tahun.

Rumput ini berumur panjang, tumbuh tegak mencapai tingi 2,5-3 m, membentuk rumpun dan tahan kering. Rumput ini daunnya lebat dan kuat, berwarna hijau tua, halus tetapi bagian tepinya kasar, tulang tengah daun berwarna putih yang jelas. Rumput ini selain sebgai rumput potong, dan sebagai bahan silage, baik juga dipergunakan sebagai hay karena batangnya kecil sedang daunnya lebar.Jika dipergunakan sebagai rumput gembala, rumput ini harus dipertahankan tumbuh pendek, yakni sekitar 40-60 cm.

Menurut Utomo (2012), rumput sudan dapat tumbuh dengan baik pada tanah yang bervariasi. Tumbuh pada ketinggian 1 sampai 1.500 diatas permukaan laut. Rumput sudan dapat dibuat hay dengan hasil yang baik karena batangnya kecil.

Legum

Berdasarkan praktikum diperoleh hasil identifikasi legum sebagai berikut:

Tabel 2. Identifikasi legum

Nama Latin	Nama Umum	Tipe
Nama Latin	Nama Umum	Tumbuh	Bunga
Sesbania sesban	Jayanti		Kupu-kupu
Stylosanthes scabra		Decumben	Kupu-kupu
Gmelina arborea	Jati putih	Erect	Bola
Calliandra calothyrsus	Calliandra	Erect	Bola
Leucaena leucochepala	Lamtoro	Erect	Bola
Bauhinia blakeana	Tayuman	Erect	Terompet
Desmodium rensonii		Erect	Kupu-kupu
Codariocalyx mubangensis	Sanagori	Erect	Kupu-kupu
Gliricidia maculata	Gamal	Erect	Kupu-kupu
Centrosema pubescens	Kacang sentro	Procumben	Kupu-kupu
Stylosanthes seabrama		Semi erect	Kupu-kupu
Mimosa invisa	Putri malu	Pohon	Bola
Sesbania grandiflora	Turi	Pohon
Desmanthus virgatus	Lamtoro mini		Bola
Calopogonium mucunoides	Kacang kalopo	Merambat	Kupu-kupu
Teramnus labialis	Maspharni	Procumben
Pueraria triloba		Procumben	Papilionaceae

Pohon turi (Sesbania glandifora). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa pohon turi bertipe tumbuh erect, tipe daun paripinate, tipe bungan terompet. Menurut Anonim (2014), daun turi banyak mengandung protein yang tinggi dan berkualitas. Tiap 100 gram berat kering, daun turi mengandung 36% protein kasar dan serat kasar yang rendah antara dibawah 18%. Namun demikian daun turi memiliki kandungan zat anti nutrisi yaitu saponin dan tanin, sejauh ini belum ada reaksi toksik yang terjadi pada ruminansia. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Kamal (1998), turi pada dataran rendah sampai dataran tinggi (1.200m), dengan curah hujan 2.000 mm/tahun. Menurut Wagner et al., (1999), biji berbentuk polong yang menggantung, berbentuk pita dengan sekat antara, panjang 20 sampai 55 cm, lebar 7 sampai 8 mm, berwarna coklat gelap. Biji 15 sampai 50, letak melintang di dalam polong. Manfaat kecambah dari biji polong dapat dijadikan kecambah atau taoge, yang mengandung vitamin C.

Gambar 1.24. Pohon turi

Kacang kalopo (Calopogonium muconoides). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa kacang kalopo bertipe tumbuh erect, tipe daun trifoliat, tipe bunga kupu-kupu, tumbuh setiap tahun. Calopogonium muconoides berasal dari Amerika Selatan Tropik bersifat perennial, pertumbuhan kalopo menjalar, merambat, tidak tahan terhadap penggembalaan, tidak tahan naungan yang lebat tetapi dapat tumbuh dengan baik didaerah yang lembab (Sukamto, 2006). Kalopo biasa dikembangbiakan dengan biji dan mampu tumbuh baik pada tanah sedang sampai berat pada ketinggian 200 sampai 1000 m diatas permukaan laut dan membutuhkan curah hujan tahunan sebesar 1270 mm (Rahman, 2006). Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur. Menurut Reksohadiprodjo (1995) legum calopo ini merambat membelit, hidup di daerah yang kelembaban udaranya tinggi dan daun lebat, dengan ciri daun berbentuk oval dan setiap tangkainya terdapat tiga helai daun. Tanaman ini berasal dari Amerika Selatan. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Gambar 1.25. Kalopo

Stylosantes seabrama. Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa Stylosantes seabrama bertipe tumbuh erect, tipe daun trifoliat, tipe bunga kupu-kupu. Menurut Anonim (2014), tanaman stylosantes memiliki batang yang kasar dan daun yang berkelompok dimana dalam setiap tangkai terdapat 3 helai daun. Perakaran jenis legum ini sangat dalam.Tanaman ini toleran terhadap tanah kurang subur.Selain itu legum ini juga tahan terhadap daerah kering atau basah tetapi tidak tahan terhadap naungan.Tanaman ini dapat tumbuh pada ketinggian 0-1.000 m dpl dengan curah hujan lebih dari 850 mm/tahun.Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Reksohadiprodjo (1995), tanaman ini berumur panjang. Batang tanaman ini besar, berbulu serta rimbun menutupi tanah.Sistem perakaran luas jauh masuk ke dalam tanah sehingga tahan terhadap kering tetapi tidak tahan terhadap naungan.

Gambar 1.26.Stylosantes seabrama

Pueraria triloba. Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa Pueraria triloba bertipe tumbuh decumben, tipe daun trifoliate dan tipe bunganya papilionaceae. Menurut Reksohadiprodjo (1995), legum ini mempunyai batang yang berkayu atau pohon, membelit, merayap dan memanjat, dapat mengeluarkan akar dari tiap ruas batangnya yang bersinggungan dengan tanah. Legum ini berakar dalam, daunnya lebar, dan berlobi tiga meruncing, kadang-kadang lobi daun tidak ada. Bunga legum ini berbentuk kupu-kupu yang tersusun pada setangkai tanda bunga, warna bunga adalah ungu sampai ungu kebiruan. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Gambar 1.27. Pueraria triloba

Lamtoro mini (Desmantus vergantus). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa lamtoro mini bertipe tumbuh erect, tipe daun bipinate, tipe bunga bola. Menurut Anonim (2104), lamtoro dapat tumbuh di dataran rendah hingga dataran tinggi dengan iklan sedang. Pohonnya dapat tumbuh hingga 10 meter dengan akar berbintil-bintil sehingga dapat digunakan sebagai penahan erosi. Lamtoro banyak sekali manfaatnya salah satunya adalah daunnya dapat digunakan sebagai pakan ternak berupa hijauan yang kaya akan protein yang tinggi berkisar 25-32 % dari bahan kering. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Jones (1998), lamtoro mini merupakan tanaman semak tahunan. Tipe tumbuhnya tegak sampai menjalar, tinggi 0,5 sampai 1,5 (kurang dari 2,5) m. Tanaman berumur pendek, sebagian besar akan mati sesudah 2 sampai 5 tahun.r

Gambar 1.28. Lamtoro mini

Lamtoro (Leucaena leucocephala). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa lamtoro bertipe tumbuh erect, tipe daun bipinate, tipe bunga bola. Leucaena leucocephala merupakan hijauan pakan yang sering diberikan kepada ternak tetapi mengandung zat anti nutrisi yaitu mimosin, untuk mengurangi kandungan mimosin lamtoro harus dijemur sehari lebih dulu sebelum diberikan pada ternak (Harjadi, 2002). Lamtoro mempunyai ciri-ciri fisik seperti tumbuh tegak, berupa pohon, tidak berduri, sistem perakarannya dalam, daunnya berkarang dan bunga berbentuk bola putih kekuningan (Bahar, 2008). Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Purwanto (2007), tanaman lamtoro berasal dari Amerika Selatan, tumbuh tegak dengan sudut pangkal antara batang dengan cabang 45^0.Daunnya kecil, tulang daun menyirip ganda dua dengan jumlah 4 sampai 8 pasang, tiap sirip tangkai daun mempunyai 11 sampai 22 helai anak daun. Bunganya merupakan bunga bangkol atau membulat, bunga majemuk menyerupai cawan tetapi tanpa daun pembalut, berbentuk bola, dan berwarna putih.

Gambar 1.29. Lamtoro

Pohon jati putih (Gmelina arborea). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa jati putih bertipe tumbuh erect, tipe daun simple, tipe bunga bola. Menurut Asmayannur et al., (2012), secara umum Gmelina arborea idealnya ditanam di areal dengan tofografi yang relatif datar (hutan dataran rendah) atau memiliki kemiringan lereng kurang dari 20%, selain itu tanaman jati membutuhkan iklim dengan curah hujan minimum 750 mm/tahun, optimum 1000-1500 mm/tahun dan maksimum 2500 mm/tahun. Walaupun demikian, tanaman jati masih dapat tumbuh di daerah dengan curah hujan 3750 mm/tahun. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Gambar 1.30. Pohon jati putih

Caliandra calothyrsus (kaliandra). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa Caliandra calothyrsus bertipe tumbuh erect, tipe daun bipinate, tipe bunga bola. Menurut Anonim (2014), kaliandra termasuk kelompok plantae, family fabaceae yang banyak tumbuh di daerah dataran rendah hingga dataran tinggi hingga 1500 m dari permukaan laut. Keunggulan kaliandra adalah dapat tumbuh dengan baik pada musim kemarau walaupun tidak sebaik pertumbuhannya dikala musim hujan, kecuali pada rawa kaliandra tidak dapat tumbuh. Kaliandra dapat digunakan sebagai penahan erosi tanah dan air, karena memiliki akar yang berbintil. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Utomo (2012), Calliandra calothyrsus atau disebut Kaliandra merupakan legum semak. Ada dua macam kaliandra, yaitu kaliandra yang banyak dijumpai adalah yang berbunga merah. Seperti legum pada umumnya, daun kaliandra mengandung protein cukup tinggi sehingga baik untuk pakan, tetapi mengandung antikualitas berupa tanin.

Gambar 1.31. Kaliandra

Bauhina blaceana (tayuman). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa Bauhina blaceana bertipe tumbuh erect, tipe daun simple, tipe bunga kupu-kupu berwarna ungu. Tayuman bertipe tumbuh erect, tipe daun simple. Menurut Anonim (2014), daun tayuman simple, bunga menyerupai kupu-kupu sehingga di Indonesia disebutnya bunga Kupu-Kupu. Biasanya ditemukan sebagai daun yang dikeringkan dan dibuat penutup buku atau barang hiasan lainnya. Tinggi tanaman tayuman dapat mencapai 17 kaki. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Purbajanti (2013), tanaman ini sering disebut sebagai tayuman. Tayuman merupakan salah satu pohon legum tahunan yang memiliki daun yang simple dan apabila tumbuh tingginya dapat mencapai 17 kaki, dengan tipe tumbuh erect atau tegak. Bentuk bunga tayuman adalah papilionaceae.Tayuman berasal dari Asia Selatan. Manfaat tayuman dapat dijadikan sebagai obat antibakteri dan antidiare.

Gambar 1.32. Bauhinia blakeana

Pohon gamal (Gilicida muculata). Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa gama bertipe tumbuh erect, tipe daun imparipinate, tipe bunga kupu-kupu. Menurut Yahya (2002), gamal adalah tanaman leguminosa yang bersifat tahunan, merupakan tanaman berkayu. Selain sebagai tanaman pakan, gamal dapat dimanfaatkan sebagai tanaman pagar atau tanaman pencegah erosi. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Kamal (1998), gamal merupakan leguminosa berumur panjang. Tanaman ini dapat beradaptasi dengan baik pada lingkungan dengan temperatur suhu antara 20 sampai 30°C dengan ketinggian tempat antara 750 sampai 1200 m. Menurut Pramana et al., (2010), ciri-ciri pada gamal diantaranya adalah pohonnya meranggas yang tingginya mencapai 12 m, batang pendek, daunnya berseling, menyirip, warnanya kuning hijau dan berambut halus.

Gambar 1.33. Gamal

Sesbania sesban. Berdasarkan hasil praktikum diperoleh bahwa Sesbania sesban bertipe tumbuh erect, tipe daun paripinate, tipe bunga kupu-kupu. Menurut Nigussie et al., (2013), Sesbania sesban adalah semak batang atau pohon berumur pendek yang dapat tumbuhhingga 8 m sampai 20 m diameter batangnya. Tanaman ini cepat tumbuh dan tumbuh dengan tinggi 4,5 m sampai 6 m dalam satu tahun, dan biasanya bunga menghasilkan polong matang pada tahun pertama setelah penanaman. Jika pohon-pohon yang ditanam secara luas jaraknya biasanya banyak cabang menyamping. Daun paripinate sempit, panjang 12 cm sampai 18 cm panjangnya dan terdiri dari 6 sampai 27 pasang selebaran bulat atau lonjong. Pohon S. sesban memiliki 20 bunga yang berwarna kuningdengan garis-garis ungu atau coklat pada mahkota. Bunga sangat menarik dan berwarna kuning, merah, keunguan, beraneka ragam atau bergaris, putih besar atau kecil, tangkai ramping, soliter atau raceme. Kelopak bundar standar atau obovate. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.u

Menurut Wardiyono (2015), Sesbania sesban merupakan perdu, tahunan, tingi ± 6 m. Batang tegak, bulat, berkayu, kasar, percabangan simpodial, putih kotor. Daun majemuk, lonjong, tersebar, panjang ± 2,5 cm, lebar ± 0,5 cm, ujung dan pangkal turnpul, pertulangan menyirip, tangkai berlekuk, panjang + 0,5 cm, hijau. Bunga majemuk, di ketiak daun, tangkai silindris, panjang 4 sampai 5 cm, hijau, benang sari bentuk tabling, panjang + 1 cm, putih, putik bertangkai, melengkung, panjang + 1 cm, hijau, mahkota bentukupu-kupu, kuning pucat. Buah membentuk polong, panjang ± 20 cm, masih muda hijau setelah tua coklat. Biji lonjong, panjang + 0,5 cm, kuning kecoklatan, akar tunggang, berbintik-bintik, coklat.

Gambar 1.34. Jayanti

Kesimpulan

Secara umum hijauan pakan dibagi menjadi dua, yaitu rumput dan legum.Rumput digolongkan berdasarkan auricle, colar, dan ligulenya. Tipe pertumbuhan rumput dibedakan menjadi erect,semi erect, procumbent, dan decumbent. Tipe daun rumput pada praktikum yaitu helaian sejajar. Tipe bunga rumput yaitu spike, panicle, dan raceme.Legum mempunyai ciri khas yaitu terdapat stipul, pteol, dan pteolul. Legum digolongkan menjadi legume menjalar, semak, dan pohon.Tipe bunga legume yaitu kupu-kupu, terompet, bola.Tipe daun legume yaitu simple, trifoliate, paripinate, dan imparipinate.

Daftar Pustaka

AAK. 2003. Hijauan Makanan Ternak Potong, Kerja dan Perah. Yayasan Kanisius,Yogyakarta

Anonim.2014. Http://www.situs-peternaakan.com. Diakses 15 Maret 2015

Asmayannur, I., Chairul, Dan Zuhri S. 2012.Analisis Vegetasi Dasar Di Bawah Tegakan Jati Emas (Tectona Grandis L.) Dan Jati Putih (Gmelina Arborea Roxb.) Di Kampus Universitas Andalas. Jurnal Biologi Universitas Andalas (J. Bio. UA.) 1(2) – Desember 2012 : 173-178

Bahar, S. 2008. Balai Pengkajian Teknologi Pertanian Sulawesi Selatan. Produktivitas Hijauan Pakan untuk Produksi Sapi Bali di Sulawesi Selatan

Chandra. 2013. Morfolgi dan klasifikasi tumbuhan. http://blog.umy.ac.id. diakses tanggal 13 Maret 2015

Ginting, S.P. And A. Tarigan. 2007. Nutritional quality of Stenotaphrum secundatum and Brachiaria humidicola for goats JITV11(4): 273-279

Hanson, A.a dan M.W. Evans.Hughes., 1996. Healt Metcalfe (Eds) Forager. Iowa state universt Press USA

Harjadi, S. 2002. Pengantar Agronomi Edisi 2. PT Gramedia, Jakarta

Jones, R.J . 1998. The value of Leucaena leucocephala as a feed for ruminants in the tropics . World Anim,

Kamal, M. 1998.Nutrisi Ternak I. Rangkuman. Lab. Makanan Ternak, jurusan Nutrisi dan Makanan Ternak, Fakultas Peternakan, UGM. Yogyakarta

Kariada, I.K. dan I.M. Sukadana. 2000. Liptan. No. Agdex : 253 dan 262/20. Denpasar

Lasamadi, R.D. S.S Malalatang, Rustandi dan S.D. Anis. 2013. Pertumbuhan dan Perkembangan Rumput Gajah Dwarf (Pennisetum Purpureum Cv. Mott) Yang Diberi Pupuk Organik Hasil Fermentasi Em4. Jurnal Zootek (“Zootek”Journal), Vol.32, No. 5 : 158–171

Litbang. 2007. Varietas Unggul Hasil Inovasi Perkebunan: Akar wangi. Http://perkebunan.litbang.pertanian.go.id. Diakses 15 Maret 2015

Mahyuddin, R. 2006. Penganter Budidaya Padang Rumput Tropika. Pradnya Pramita. Jakarta

Miles, J.W., Maass, B.L. and do Valle, C.B. (eds) (1996) Brachiaria: Biology, Agronomy and Improvement. CIAT, Cali, Colombia. Rahardjo, Tri. 2002. Ilmu Teknologi Pangan. Unsoed. Purwokerto

Newman,Y. J. Vendramini, and A. Blount. 2013. Bahiagrass (Paspalum notatum): Overview and Management .http://edis.ifas.ufl.edu/ag342 diakses tanggal 15 Maret 2015

Nigussie, Zerihunand Getachew Alemayehu, 2013, Sesbania sesban (L.)Merrill: Potential uses of an underutilized multipurpose tree in Ethiopia. Academics

Nyambati, E, M., Muyekho, F, N, dan Onginjo, E, dan Lusweti, C, M. 2010. Production, characterization and nutritional quality of Napier grass cultivar in western Kenya. Kenya Agricultural Research Institute, Kenya.

Parrakkasi, Aminudin.2009. Ilmu Nutrisi dan Makanan Ternak Ruminan.UI. Jakarta

Ilmu Nutrisi Makanan ternak Ruminansia. Indonesia. University Press. Jakarta.

Polakitan, D dan A. Kairupan.2007. Pertumbuhan produktivitas rumput gajah dwarf pada umur potong berbeda. BPTP Sulawesi Utara

Purbajanti, E. D. 2013.Rumput dan Legum sebagai Hijauan Makanan Ternak. Cetakan pertama. Graha Ilmu Percetakan. Bogor.

Purwanto, Imam. 2007. Mengenal Lebih Dekat Leguminoseae. Penerbit Kanisius. Yogyakarta.

Pramana, A.A, Fauzi, M.A., Widyani, N. Heriansyah, I. Dan Roshetko, J.M. 2010. Panduan Lapangan Untuk Pertanian. CIFOR, Bogor

Rahardjo, T. 2002. Ilmu Teknologi Pangan. Unsoed. Purwokerto

Rahman, S.Y. 2006.Respons Pertumbuhan dan Adaptasi Terhadap Cekaman Kekeringan 3 Jenis Tanaman Legum Pakan yang Diinokulasi Cendawan Mikoriza Arbuskula dan Rhizobium di Ultisol. 1 134

Reksohadiprodjo, Soedomo. 1995. Pengantar Ilmu Peternakan Tropik. Gadjah Mada University. Yogyakarta

Rismunandar. 2009. Mendayagunakan Tumbuhan Rumput. Sinar Baru . Bandung

Rukmana, Rahmat. 2005. Budidaya rumput unggul, Hijauan Makanan Ternak. Yogyakarta: Kanisius.

Sanderson, M. A. and R. A., Paul. 2008. Perennial forages as second Generation bioenergy crops. International Journal of Molecular Sciences

Siregar, M.E., 1996. Produksi Hijauan dan Nilai Nutrisi Tiga Jenis Rumput Pennisetum dengan Sistem Potong Angkut. Balai Penelitian Ternak. Ciawi, Bogor

Suatna, I, M. 2003.Evaluasi produktivitas rumput unggul pada dataran tinggi di Bali. Majalah peternakan Indonesia

Suharni, Sri. 2005. Evaluasi Morfologi, Anatomi, Fisiologi dan Sitologi Tanaman Rumput Pakan yang Mendapat Perlakuan Kolkisin. Universitas Diponegoro. Semarang.

Sukamto, B. 2006. Ilmu Tanaman Makanan Ternak. Jurusan Nutrisi dan Makanan Ternak, Fakultas Peternakan Universitas Diponegoro, Semarang

Sumarsono. 2007. Ilmu Tanaman Makanan Ternak. Facultas Peternakan Universitas Diponegoro, Semarang.

Sutarya, R dan Grubben, G. 1995.Pedoman Bertanam Sayuran Dataran Rendah.Gadjah Mada University Press. Yogyakarta

Sutaryono, Yusuf., dan Partridge, Ian J. 2002. Mengelola Padang Rumput alam di Indonesia Tenggara. Universitas Mataram. Lombok

Sutedi, B., R. Prawiradiputra, A. Semali., Sajimin dan A. Fanindi .2004. Karakterisasi rumput rhodes (chloris gayana) sebagai pakan ternak. Seminar Nasional Teknologi Peternakan dan Veteriner

Sutedi, E, Siti Yuhaeni dan Bambang R Prawiradiputra. 2002. Karakterisasi Rumput Benggala (Panicum maximum) sebagai Pakan Ternak. Seminar Nasional Teknologi Peternakan dan Veteriner. Balai Penelitian Ternak. Bogor

Utomo, Ristianto. 2012. Bahan Pakan Berserat untuk Sapi. Klaten: PT. Intan Sejati

Wagner, Warren L., Herbst, Derral R., Sohmer, SH 1999. Manual dari tanaman berbunga Hawaii. Revised edition.Edisi revisi.Bernice P. Bishop Museum special publication.Bernice P. Bishop Museum publikasi khusus.University of Hawai’i Press/Bishop Museum Press, Honolulu.University of Hawaii Press.Bishop Museum Press. Honolulu. 1919 pp. 1919 hal.(two volumes). (dua jilid)

Wardiyono. 2015. Sesbania sesban. wwnkw.proseanet.org. diakses 15 Maret 2015

Wijayanti, A.W. 2008. Pengelolaan Tanaman Tebu (Saccharum officinarum L.) Di Pabrik Gula Tjoekir PTPN X, Jombang, Jawa Timur; Studi Kasus Pengaruh Bongkar Ratoon Terhadap Peningkatan Produktivitas Tebu. Skripsi.Departemen Agronomi dan Hortikultura, Institut Pertania Bogor. Bogor. 68 hal.

Yahya. 2002. Ilmu Pertanian. Erlangga, Jakarta.

LAMPIRAN

BAB III

IDENTIFIKASI BIJI

TINJAUAN PUSTAKA

Identifikasi Biji

Biji dibentuk dengan adanya perkembangan bakal biji. Biji masak terdiri dari 3 bagian yaitu embrio, endosperm (hasil pembuahan ganda), dan kulit biji yang dibentuk oleh dinding bakal biji termasuk kedua integumennya. Embrio adalah sporofit muda yang tidak segera melanjutkan pertumbuhannya, melainkan memasuki masa dorman. Saat itu biasanya embrio tahan stres. Embrio senantiasa diiringi cadangan makanan baik organik maupun anorganik yang berada disekeliling embrio atau di dalam jaringannya sendiri. Kulit biji atau testa bersifat tahan atau kadang-kadang memiliki permukaan yang memudahkan penyebarannya oleh angin. Biji mampu bertahan pada lingkungan yang keras. Cadangan makanan dalam biji menunjang sporofit muda yang muncul dari biji yang berkecambah sampai mampu berfotosintesis. Sebab itu, penyimpanan cadangan makanan merupakan salah satuu fungsi utama biji. Penyimpanan makanan terutama dilakukan di luar embrio, yakni dalam endosperm atau perisperm. Endosperm dibentuk oleh hasil pembelahan penyatuan inti sel jantan dengan inti sel sentral. Perisperm merupakan jaringan nuselus yang menyimpan cadangan makanan (Estiti, 1995).

Tumbuhan berkeping biji tunggal (atau monokotil) adalah salah satu dari dua kelompok besar tumbuhan berbunga yang bijinya tidak membelah karena hanya memiliki satu daun lembaga. Kelompok ini diakui sebagai takson dalam berbagai sistem klasifikasi tumbuhan dan mendapat berbagai nama, seperti monocotyledoneae, liliopsida, dan lilidae. Tumbuhan berbiji belah atau tumbuhan dikotil adalah segolongan tumbuhan berbunga yang memiliki ciri khas yang sama dengan memiliki sepasang daun lembaga (kotiledon:daun yang terbentuk pada embrio) berbentuk sejak dalam tahap biji sehingga biji sebagian besar anggotanya bersifat mudah terbelah dua dan sistem Crouquist mengakui kelompok ini sebagai takson dan menamakannya kelas Magnoliopsida. Nama ini dibentuk dengan menggantikan akhiran -aceae dalam nama Magnoliopsida dengan akhiran –opsida (Kusdianti, 2009).

Penyerbukan adalah sampainya serbuk sari pada tempat tujuan. Macam-macam penyerbukan antara lain: anemogami yaitu penyerbukan yang disebabkan oleh angin. Ciri-ciri tumbuhan yang penyerbukannya dibantu oleh angin yaitu bunganya tidak bermahkota, serbuk sarinya bergantungan kedudukannya, serbuk sarinya banyak dan ringan, kepala putiknya besar, contohnya: rumput, tebu, dan alang-alang. Zoidiogami yaitu penyerbukan yang dibantu oleh hewan. Berdasarkan jenis hewannya dapat dibedakan lagi menjadi entomogami penyebabnya adalah serangga. Tumbuhan yang penyerbukannya memerlukan bantuan serangga umumnya mempunyai ciri-ciri yaitu mahkota bunga berwarna mencolok, mengeluarkan bau yang khas, mempunyai kelenjar madu. Ornitogami penyerbukan karena bantuan burung, terjadi pada tumbuhan yang bunganya mengandung madu atau air. Kiropterogami penyerbukan karena bantuan kelelawar, terjadi pada tumbuhan yang bunganya mekar pada malam hari. Malakogami penyerbukan karena bantuan siput, terjadi pada tumbuhan yang banyak dilekati siput (lsahi, 2011).

Hidrogami yaitu penyerbukan karena bantuan air. Ini pada umumnya terjadi pada tumbuhan yang hidup di dalam air, misalnya Hydrilla. Antropogami disebut juga penyerbukan buatan atau sengaja, yaitu penyerbukan karena bantuan manusia. Hal ini dilakukan oleh manusia karena tidak terdapatnya vektor yang dapat membantu penyerbukan. Contohnya, tumbuhan vanili (lsahi, 2011).

MATERI DAN METODE

Materi

Alat. Alat yang digunakan pada praktikum identifikasi biji yaitu jangka sorong, lembar kerja, kamera dan alat tulis.

Bahan. Bahan yang digunakan pada praktikum identifikasi biji yaitu biji rumput dan legum.

Metode

Metode yang digunakan pada praktikum identifikasi biji adalah biji diamati ciri-ciri spesifiknya. Ciri-ciri spesifik yang diamati yaitu warna, bentuk, ukuran, dan ketebalan. Ukuran dan ketebalan diukur dengan jangka sorong. Hasil pengamatan ditulis di lembar kerja.

HASIL DAN PEMBAHASAN

Biji merupakan bagian dari sistem reproduksi generatif pada tanaman legum dan rumput. Biji pada tanaman legum dan rumput berbeda-beda sesuai dengan spesiesnya. Pengamatan biji hasil praktikum sebagai berikut:

Tabel 2.1. Identifikasi biji

Nama Biji	Ciri-ciri Spesifik Biji
Nama Biji	Warna	Bentuk	Ukuran (mm)	ketebalan Kulit
Acasia vilosa	Coklat	Bulat	1,6	Keras
Albizia falcatara java (sengon laut)	Coklat Kayu	Lonjong	1,3	Keras
Arachis hypogeal (kacang tanah)	Coklat Muda	Bulat	6,34	Lunak
Bauhinia blakeana	Coklat Tua	Gepeng	2,1	Keras
Calopogonium mucunoides (kalopo)	Hitam	Persegi Panjang	2, 7	Lunak
Centrosoma pubescens	Hitam	Gepeng Lonjong	2	Keras
Desmantus vergantus (lamtoro mini)	Coklat Kehitaman	Pipih	1,42	Keras
Desmodium rensonii	Coklat muda	Pipih	0,8	Lunak
Flemingia macrophylla (opo-opo)	Hitam	Bulat	2,5	Keras
Gliricidia maculata (gamal)	Coklat Muda	Pipih	2,3	Keras
Glycine max (kedelai)	Coklat Muda	Bulat Lonjong	5,8	Lunak
Gmelina arborea (jati putih)	Coklat Kekuningan	Bulat	11	Lunak
Leucaena leucephala (lamtoro)	Coklat tua	Pipih	1,8	Keras
Mucuna pruriensis	Putih	Lonjong	7,4	Keras
Oryza sativa (padi)	Kuning	Lonjong	2,1	Lunak
Phallaris canariensis	Kuning	Lonjong	1,25	Lunak
Pueraria phasedoides	Coklat	Bulat	2	Keras
Sesbania glandifora (turi)	Coklat Tua	Lonjong	4,9	Tebal
Sorghum bicolor (cantel merah)	Merah	Bulat	2,1	Lunak
Sorghum helepense (sorgum putih)	Putih	Bulat	2,7	Lunak
Stylosanthes cv jerano	Hijau	Lonjong	1,3	Tebal
Teramnus labialis	Hitam	Lonjong	1,18	Keras
Vigna sinensis (kacang panjang)	Ungu	Lonjong	5,8	Tebal
Zea mays (jagung)	Kuning	Bulat	7,1	Keras

Acasia vilosa. Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Acasia vilosa biji berwarna coklat. Bentuk biji bulat. Ukuran biji 1,6 mm. Ketebalan kulit biji keras.

Gambar 2.1. Biji Acasia vilosa

. Prohati (2009) menyatakan bahwa biji Acasia vilosa berbentuk bulat telur hingga elips, berukuran panjang 4 sampai 6 mm dan lebar 3 sampai 4 mm, berwarna hitam mengkilap, keras, tangkai biji panjang berwarna kuning atau merah. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Jukema dan Danimihardja (1997) menyatakan bahwa akasia menyukai daerah kering dengan curah hujan rendah. Wawo (2004) menyatakan bahwa Acacia vilosa adalah jenis inang primer yaitu inang yang diperuntukkan bagi pertumbuhan suatu semai di dalam polibag. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Albizia falcatara java. Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Albizia falcatara java biji berwarna coklat kayu. Bentuk biji lonjong. Ukuran biji 1,3 mm. Ketebalan kulit biji keras.

Gambar 2.2. Biji Albizia falcatara java

Menurut Prohati (2009), Albazia falcatara java mempunyai buah polong, pipih. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur. Nursyamsi dan Tikupadang (2014) menyatakan bahwa sengon laut termasuk dalam famili Mimosaceae dan lebih dikenal dengan nama daerah sengon atau jeungjing merupakan jenis tanaman yang cepat tumbuh. Pertumbuhan bibit sengon laut yang optimal di lapangan, maka diperlukan bibit yang bermutu. Mutu bibit di persemaian dipengaruhi secara langsung antara lain oleh kondisi media tumbuh. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Arachis hypogea (kacang tanah). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Arachis hypogea (kacang tanah) warna coklat muda. Bentuk biji bulat tak beraturan. Ukuran biji 6,34 mm. Ketebalan kulit biji lunak.

Gambar 2.3. Biji Arachis hypogea

Faronika et al., (2013) menyatakan bahwa varietas kacang tanah berbeda nyata pada parameter tinggi tanaman, umur berbunga, jumlah polong, jumlah polong hampa dan berisi, jumlah biji per tanaman, berat biji per tanaman. Semua varietas yang digunakan menunjukkan ukuran biji yang berbeda-beda dengan ukuran terbesar dan terpanjang dimiliki oleh varietas. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur. Prihatman (2000) menyatakan bahwa kacang tanah merupakan tanaman pangan berupa semak yang berasal dari Amerika Selatan, tepatnya dari Brazil. Penanaman pertama kali dilakukan oleh orang Indian (suku asli bangsa Amerika).

Bauhinia blakeana (tayuman). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Bauhinia blakeana (tayuman) yaitu coklat tua. Bentuk biji pipih. Ukuran biji 2,1 mm. Ketebalan kulit biji keras.

Gambar 2.4. Biji Bauhinia blakeana

Dewi et al., (2014) menyatakan bahwa karakteristik biji bauhinia antara lain warna kuning, bau khas. Biji bersifat asam dengan pH 6. Hasil praktikum sesuai dengan literatur. Akbar (2014) menyatakan bahwa tayuman adalah tanaman yang dimanfaatkan olehmasyarakat desa sebagai bahan makanan dan hijauan makanan ternak dimana tanaman tersebut sering digunakan sebagai tanaman pagar.

Calopogonium mucunoides (kalopo). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Calopogonium mucunoides (kalopo) biji berwarna hitam. Bentuk biji persegi panjang. Ukuran biji 2,7 mm. Ketebalan kulit biji lunak.

Gambar 2.5. Biji Calopogonium mucunoides

Fanindi dan Prawiradiputra (2005) menyatakan bahwa calopogonium biasanya diperbanyak dengan menggunakan biji, mulai disebarkan pada musim hujan dengan cara mekanik atau manual. Biji yang diperlukan untuk 1 hektar adalah 1 sampai 3 kg. Cara penanaman biji disebarkan kemudian dibenamkan ke dalam tanah untuk meningkatkan daya tumbuhnya. Ketika baru panen biji, biasanya presentase biji yang sulit berkecambah lebih dari 75%.. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Menurut Prohati (2009), tanaman ini mempunyai bunga tandan lampai, panjang hingga 20 cm, bunga dalam fasikulum berjumlah 2 sampai 6, berwarna biru atau ungu. Polong memita-melonjong, lurus atau melengkung, dengan rambut coklat kemerahan diantara biji, biji berjumlah 3 sampai 8. Biji berbentuk persegi padat dengan panjang 2 sampai 3 mm, berwarna kekuningan atau coklat kemerahan.

Centrosema pubescens. Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Centrosema pubescens biji berwarna hitam. Bentuk biji gepeng lonjong. Ukuran biji 2 mm. Ketebalan kulit biji keras.

Gambar 2.6. Biji Centrosema pubescens

Fanindi dan Prawiradiputra (2005) menyatakan bahwa Centrosema pubescens dan Calopogonium tumbuh setiap tahun pada musim panas dibawah kondisi basah dan berbiji setiap tahun. Centrosema pubescens juga mempunyai toleransi terhadap sinar rendah. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Desmantus vergantus (lamtoro mini). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Desmantus vergantus (lamtoro mini) warna coklat kehitaman. Bentuk biji pipih. Ukuran biji 1,42 mm. Ketebalan kulit biji keras.

Gambar 2.7. Biji Desmantus vergantus

Hindrawati (2007) menyatakan bahwa biji lamtoro mini cepat tumbuh walaupun pada musim kemarau. Keuntungan lamtoro mini dapat mengundang binatang kecil warna putih sebagai makanan tambahan burung walet. Hasil praktikum sesuai dengan literatur. Devi et al., (2013) menyatakan bahwa lmtoro adalah salah satu tanaman di daerah tripos yang memiliki kualitas paling tinggi dan paling palatable. Tepung daunnya digunakan sebagai pakan unggas dan merupakan sumber protein tanaman yang murah dan bernilai gizi tinggi.

Desmodium rensonii. Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Desmodium rensonii biji berwarna coklat muda. Bentuk biji jgepeng. Ukuran biji 0,8 mm. Ketebalan kulit biji lunak.

Gambar 2.8. Biji Desmodium rensonii

Prawiradiputra et al., (2004) menyatakan bahwa desmodium merupakan tanaman dari Amerika Tengah yang berupa leguminosa semak, mempunyai daun majemuk beranak daun tiga, pertumbuhan mencapai tinggi 3 m, berbatang dan berkayu setelah tua. Biji tanaman desmodium yang ditanam dalam polibag, setelah 6 bulan dapat dipotong. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Flemingia macrophylla (opo-opo). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri-ciri biji Flemingia macrophylla (opo-opo) warna hitam. Bentuk biji bulat. Ukuran biji 2,5 mm. Ketebalan kulit biji keras.

Gambar 2.9. Biji Flemingia macrophylla

Auxillary plants (1997) menyatakan bahwa polong Flemingia macrophylla kecil dan apabila matang berubah menjadi cokelat dan kering. Setiap polong umumnya memiliki dua biji yang mengkilap. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur. Menurut Ghimire et al., (2013), Flemingia macrophylla merupakan legume yang perennial dan mempunyai potensi untuk dikembangkan. Menurut Prohati (2009), buah polong kering pecah memanjang, panjang 8-15 mm dan lebar 5 mm, mengandung dua biji. Biji berbentuk bundar, dengan diameter biji 2 sampai 3 mm, berwarna hitam mengkilap.

Gliricidia maculata (gamal). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Gliricidia maculata (gamal) warna coklat muda. Bentuk biji pipih. Ukuran biji 2,3 mm. Ketebalan kulit biji lunak.

Gambar 2.10. Biji Gliricidia maculata

Djogo (1996) menyatakan bahwa gamal mempunyai kemampuan tumbuh yang baik pada dataran tinggi dengan curah hujan yang cukup, namun juga mampu tumbuh pada daerah yang kering di dataran rendah yangkering seperti terdapat di Nusa Tenggara Timur dan mampu berbuah dan menghasilkan biji dalam jumlah yang banyak. Restu dan Mappangaja (2005) menyatakan bahwa pemberian pupuk memperlihatkan pengaruh yang nyata terhadap produksi polong dan biji gamal. Hasil praktikum sesuai dengan literatur. Menurut Wada (2009), G. macullata bunganya berwarna putih dengan pollebih sering digunakan stek batang dalam usaha pengembang biakan gamal alasannya sulit mencari dan mengumpulkan biji gamal. penanaman stek lebih baik berasal dari batang bawah tanamkan yang cukup usia diatas 2 tahun dengan diameter diatas 4 cm.

Glycine max (kedelai). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Glycine max (kedelai) yaitu coklat muda, bentuk bulat lonjong, ukuran 5,8 mm, dan ketebalan kulit lunak.

Gambar 2.11. Biji Glycine max

Thoha et al., (2008) menyatakan bahwa kacang kedelai termasuk salah satu sumber pangan yang memiliki sejumlah produk turuann mulai dari produk hulu berupa kacang kedelai rebus hingga tahu, tofu, tempe, kecap, susu kedelai, minyak kacang kedelai, dan sebagainya. Vitamin E yang terkandung dalam kacang kedelai merupakan salah satu vitamin yang larut dalam lemak dan tidak larut dalam air. Vitamin E tersebut sangat bermanfaat untuk mencegah penuaan kulit, menghaluskan kulit, mencegah pendarahan pada wanita hamil, dan mencegah keguguran. Hasil praktikum sesuai dengan literatur.

Taufik dan Novo (2004) menyatakan bahwa kedelai merupakan tanaman legum yang kaya protein nabati, karbohidrat dan lemak. Biji kedelai juga mengandung fosfor, besi, kalsium, vitamin B dengan komposisi asam amino lengkap sehingga potensial untuk pertumbuhan tubuh manusia. Kedelai juga mengandung asam-asam tak jenuh yang dapat mencegah timbulnya pengerasan pembuluh nadi.

Gmelina arborea (jati putih). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Gmelina arborea (jati putih) warna coklat kuning. Bentuk biji bulat. Ukuran biji 11 mm. Ketebalan kulit biji lunak.

Gambar 2.12. biji Gmelina arborea

Nurhasybi dan Kartiko (2003) menyatakan bahwa biji jati putih akan berkecambah pada hari ke 9 sampai 16. Perkecambahan terjadi sampai hari ke 2 atau lebih. Hasil praktikum sesuai dengan literatur.

Menurut Rachmawati (2002), biji pada tanaman ini mempunyai ciri-ciri yaitu keras seperti batu, panjang 16 sampai 25 mm, permukaan licin, satu ujung bulat, ujung lain runcing. Terdiri dari 4 ruang, jarang dijumpai 5 ruang. Sedikitnya satu ruang berisi benih, jarang dalam satu buah terdiri dari dua biji batu. Ukuran benih meningkat menurut ukuran biji, yaitu panjang 6 sampai 9 mm. Berat 1.000 butir biji batu sekitar 400 gram.

Leucaena leucocephala (lamtoro). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Leucaena leucocephala (lamtoro) warna coklat tua. Bentuk biji pipih. Ukuran biji 1,8 mm. Ketebalan kulit biji keras.

Gambar 2.13. Biji Leucaena leucocephala

Sulistyowati (2007) menyatakan bahwa biji lamtoro mengandung flavonoid. Aktivitas antioksidan yang dimiliki oleh sebagian besar flavonoid telah diteliti. Biji lamtoro diinfudasi kemudian diekstraksi dengan etanol sehingga diperoleh ekstrak air dan etanol. Konsentrasi ekstrak etanol dan ekstrak air dari infusa biji lamtoro mempunyai kemampuan penghambat oksidasi. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Harjadi (2002) menyatakan bahwa Leucaena leucocephala merupakan hijauan pakan yang sering diberikan kepada ternak tetapi mengandung zat anti nutrisi yaitu mimosin, untuk mengurangi kandungan mimosin lamtoro harus dijemur sehari lebih dulu sebelum diberikan pada ternak.

Mucuna pruriensis (koro benguk). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Mucuna pruriensis biji berwarna putih. Bentuk biji lonjong. Ukuran biji 7,4 mm. Ketebalan kulit biji keras.

Gambar 2.14. Biji Mucuna pruriensis

Sudiyono (2010) menyatakan bahwa koro benguk berwarna hitam dan ada yang putih. Koro benguk merupakan salah satu jenis kacang-kacangan lokal yang memilki beragam varietas dan bisa digunakan sebagai bahan abku pengganti kedelai dalam pembuatan tempe. Kandungan gizi koro tidak kalah dengan kedelai yaitu karbohidratnya tinggi dan protein yang cukup tinggi serta kandungan lemak yang rendah. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur. Winarni et al., (2011) menyatakan bahwa pemanfaatan biji koro benguk di Indonesia masih terbatas karena dikenal sebagai tumbuhan beracun yang berbahaya bagi manusia dan ternak.

Oryza sativa (padi). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Oryza sativa (padi) warna kuning. Bentuk biji lonjong. Ukuran biji 2,1 mm. Ketebalan kulit biji lunak.

Gambar 2.15. Biji Oryza sativa

Lu (1999) menyatakan bahwa padi merupakan tanaman pangan yang sangat penting di dunia, melebih kentang, jagung, gandum, dan serealia lainnya. Tanaman ini dipertimbangkan sangat penting kehadiranya di dunia karena padi merupakan pangan pokok bagi lebih dari setengah penduduk dunia. Sitompul dan Guritno (1995) menyatakan bahwa penampilan bentuk tanaman dikendalikan oleh sifat genetik tanaman dibawah pengaruh faktor-faktor lingkungan. Faktor lingkungan yang diyakini dapat mempengaruhi terjadinya perubahan morfologi tanaman antara lain iklim, suhu, jenis tanah, kondisi tanah, ketinggian tempat, dan kelembaban.. Hasil praktikum sesuai dengan literatur.

Phallaris canariensis. Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Phallaris canariensis biji berwarna kuning. Bentuk biji lonjong. Ukuran biji 1,25 mm. Ketebalan kulit biji lunak.

Gambar 2.16. Biji Phallaris canariensis

Menurut Wichman (2012), biji kenari merupakan salah satu tanaman Indonesia yang banyak digunakan sebagai pangan. Biji kenari bisa dimakan segar dan dapat digunakan sebagai bumbu atau rempah-rempah. Agromedia (2008), biji kenari juga bermanfaat untuk menurunkan kolesterol, mencegah penyempitan arteri, dan dapat sebagai antioksidan

Pueraria phaseloides. Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Pueraria phasedoides biji berwarna coklat. Bentuk biji bulat. Ukuran biji 2 mm. Ketebalan kulit biji keras.

Gambar 2.17. Biji Pueraria phaseloides

. Menurut Prohati (2009), biji Pueraria phaseoloides berbentuk silindris hingga mengubus dengan sudut membulat, berukuran sekitar 3 mm x 2 mm, berwarna coklat hingga hitam kecoklatan. Ali et al., (2012) menyatakan abhwa pueraria toleran pada intensitas cahaya rendah dan tinggi produktivitasnya serta memiliki palatabilitas yang baik.

Sesbania glandifora (turi). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Sesbania glandifora (turi) warna coklat tua. Bentuk biji lonjong. Ukuran biji 4,9 mm. Ketebalan kulit biji tebal.

Gambar 2.18. Biji Sesbania glandifora

Rusli (2010) menyatakan bahwa biji turi dapat dimanfaatkan sebagai substusi kedelai pada pembuatan kecap. Hasil organoleptik meliputi aroma, rasa, dan warna pada pembuatan kecap dari biji turi ini mendapatkan warna, aroma, dan rasa yang hampir sama dengan kecap manis yang banyak beredar di pasaran. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Wagner et al., (1999) menyatakan bahwa biji turi berbentuk polong yang menggantung, berbentuk pita dengan sekat antara, panjang 20 sampai 55 cm, lebar 7 sampai 8 mm, berwarna coklat gelap. Biji 15 sampai 50, letak melintang di dalam polong. Manfaat kecambah dari biji polong dapat dijadikan kecambah atau taoge, yang mengandung vitamin C.

Sorghum bicolor (sorghum bunga merah). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Sorghum bicolor (sorghum bunga merah) warna merah. Bentuk biji bulat. Ukuran biji 2,1 mm. Ketebalan kulit biji lunak.

Gambar 2.19. Biji Sorghum bicolor

Amin et al., (2012) menyatakan bahwa sorghum merupakan tanaman yang berpotensi untuk dikembangkan, baik dari biji maupun niranya. Nio dan Ballo (2010) menyatakan bahwa biji memerlukan sejumlah besar air yang harus diserap sebelum perkecambahan yaitu sekitar dua atau tiga kali dari berat keringnya. Hasil praktikum sesuai dengan literatur. Angelina et al., (2013), sorgum memiliki struktur yang mirip dengan jenis sereal lainnya. Komponen utama dari sorgum adalah pericarp, testa dan endosperm, serta embrio.

Sorghum helepanse (sorghum bunga putih). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Sorghum helepanse (sorghum bunga putih) warna putih. Bentuk biji bulat. Ukuran biji 2,7 mm. Ketebalan kulit biji lunak.

Gambar 2.20. Biji Sorghum helepanse

Ruchjaniningsih (2009) menyatakan bahwa sorgum putih bentuk gepeng dan berwarna putih. Kandungan PK sorgum yaitu 9,5 %, SK 0,22 %, dan karbohidrat 68 %. Hasil praktikum sesuai dengan literatur. Angelina et al., (2013) menyatakan bahwa sorgum putih yang dipanen dari Pemalang memiliki diameter rata-rata 0,3 cm.

Stylosantes cv jerano. Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri yspesifik biji Stylosantes cv jerano (kalopo) biji berwarna hijau. Bentuk biji lonjong. Ukuran biji 1,3 mm. Ketebalan kulit biji tebal.

Gambar 2.21. Biji Stylosantes cv jerano

Horne (2001) menyatakan bahwa biji stylosanthes adalah keras dan berukuran sedang. Sati kilogram bisa dijumpai 300 sampai 400 biji legum stylosanthes. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur. Menurut Poetri dan Marsetyo (2005), legum sangat palatable, kecernaan cukup tinggi.

Teramnus labialis. Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Teramnus labialis biji berwarna hitam. Bentuk biji lonjong. Ukuran biji 1,18 mm. Ketebalan kulit biji keras.

Gambar 2.22. Biji Teramnus labialis

Plengelly dan Eagles (1996), Teramnus labialis merupakan legum tropik anggota dari tribus Phascolcae, subtribus Glycininae. Teramnus labialis mempunyai 275 spesies yang dibididaya oleh Australian Tropical Forages Genetic Resource Centre (ATFGRC) dan diklasifikasikan ke dalam grup seleksi germplasma.

Vigna sinensis. Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Calopogonium mucunoides (kalopo) biji berwarna ungu. Bentuk biji lonjong. Ukuran biji 5,8 mm. Ketebalan kulit biji tebal.

Gambar 2.23. Biji Vigna sinensis

Rukmana (1995) menyatakan bahwa produksi kacang panjang varietas unggul dapat mencapai 20 ton polong muda per hektar. Tanah sebagai salah satu faktor produksi pertanian mempunyai fungsi fisika, biologi, maupun kimia yang menentukan kesuburan. Menurut Pardono (2009), berat polong kacang panjang per tanaman antara 177,4 sampai 199,65 gram.

Zea mays (jagung). Berdasarkan pengamatan diketahui ciri – ciri spesifik biji Zea mays (jagung) warna kuning. Bentuk biji bulat tidak beraturan. Ukuran biji 7,1 mm. Ketebalan kulit biji keras.

Gambar 2.24. Biji Zea mays

Surtinah (2007) menyatakan bahwa jagung yang dipanen pada umur lebih dari 75 hari menghasilkan biji dengan tekstur yang lebih keras dan biji berkerut sehingga menurunkan kualitas produksi. Candra (2013) menyatakan bahwa tongkol jagung tumbuh dari buku, di antara batang dan pelepah daun. Pada umumnya, satu tanaman hanya dapat menghasilkan satu tongkol produktif meskipun memiliki sejumlah bunga betina. Buah Jagung siap panen. Beberapa varietas unggul dapat menghasilkan lebih dari satu tongkol produktif, dan disebut sebagai varietas prolifik. Menurut Pratama et al., (2014), ukuran biji jagung 4 mm samai dengan 7 mm mempunyai berat antara 4,93 sampai 8,65 gram.

Biji dapat awet dalam keadaan kering, disimpan di tempat yang tidak lembab dan terjaga dari kontaminan, yang sebelumnya dicuci dengan zat pengawet seperti alkohol. Zat pengawet biji jagung yang digunakan pada praktikum yaitu fumarin. Menurut Bentley dan Larthe (2015), fumarin merupakan senyawa antikoagulan dan dapat digunakan untuk rodentisida.

Gajah dan terkecil pada varietas Jepara. Warna biji kacang tanah yang diperoleh pada varietas Gajah dan Biawak adalah cokelat, Jepara dan Komodo orange terang, sedangkan Landak dan Simpai merah gelap. Cibro et al., (2008) menyatakan bahwa kacang tanah memiliki kandungan protein 25 sampai 30%, lemak 50 sampai 50%, karbohidrat 12% serta vitamin B1. Hasil praktikum telah sesuai dengan literatur.

Kesimpulan

Legum dan rumput dapat berkembang biak melalui biji. Warna biji legume dan rumput bervariasi kuning, merah, hijau, coklat, putih, dan ungu. Bentuk biji legume dan rumput bervariasi pipih, bulat, lonjong, dan persegi panjang. Ukuran biji yang terkecil yaitu Desmodium rensonii 0,8 mm dan yang terbesar yaitu Gmelina arborea 11 mm. Ketebalan biji bervariasi tebal, lunak, dan keras. Penyebaran biji dapat melalui angin, air, hewan, dan manusia.

Daftar Pustaka

Agromedia. 2008. Buku Pintar Tanaman Obat. Agromedia Pustaka, Jakarta

Akbar, M, I. 2014. Pengelolaan tanaman pagar tayuman di desa Banaran, Gunung Kidul, Yogyakarta. D3 Kehutanan UGM, Yogyakarta

Ali, A. I. M., Yakup dan Sabarudin. Kepadatan Spora dan Tingkat Kolonisasi Pueraria phaseoloides pada beberapa tingkat naungan dan inokulasi fungi mikoriza arbuskular. Jurusan Peternakan, Fakultas Pertanian Universitas Sriwijaya, Palembang

Amin, M, N, G., D. Hidayati, dan C. Indarto. 2012. Optimasi variabel proses terhadap produksi etanol dari biji sorghum (Sorghum bicolor). Jurusan Teknologi Industri Pertanian, Fakultas Pertanian, Trunojoyo Madura

Angelina, A., T. Rosianan., N. Istianah., S. Gunawan dan A. K. Anal. 2013. Pengujian parameter biji Sorgum dan pengaruh analisa total asam laktat dan pH pada tepung sorgum terferentasi. Jurusan Teknik Kimia, Fakultas Teknologi Industri, ITS, Surabaya

Auxillary Plants. 1997. PROSEA-Plant Resources of South-East Asia 11. Bogor

Bentley, E, W, dan Larthe, Y. 2015. The Comparative rodentificidal efficiency of five anti-coagulants. http://journals.cambridge.org/action diakses tanggal 20 Mei 2015

Chandra. 2013. Morfologi dan klasifikasi tumbuhan. http://blog.umy.ac.id. diakses tanggal 13 Maret 2015

Cibro, M. A. 2008. Repon beberapa varietas kacang tanah terhadap pemakaian mikoriza pada berbagai cara pengolahan tanah. Universitas Sumatera Utara, Medan.

Devi, M, V, N., V. N. Ariharan dan P. Nagendra. 2013. Nutritive value and potential uses of Leucaena leucocephala as biofuel . Journal of Pharm, Biol. Sci. Vol. 4

Dewi, E, M, K., H, Soetjipto, dan A. Kristijanto. 2014. Karakteristisasi dan komposisi kimia minyak biji tumbuhan kupu-kupu (Bauhinia purpurea L) bunga merah muda. Jurusan Kimia, Fakultas Sains dan Matematika, Universitas Kristen Satya Wacana, Salatiga.

Djogo, A. P. Y. 1996. Penggunaan glisirida di Indonesia. Asia Pasific groforestry Network Sekretariat. Bogor.

Estiti. 1995. Pertumbuhan Tanaman. http://www.edukasi.net./id/study/ pertumbuhan tanaman.html. Diakses pada tanggal 14 April 2015

Fanindi, A dan B. R. 2005. Prawiradiputra. Karakteristik dan pemanfaatan kalopo (Calopogonium sp.). Balai penelitian ternak, Bogor

Faronika, M., L. A. M. Siregar., dan H. Hasyim. 2013. Evaluasi produktifitas dan kualitas beberapa varietas kacang tanah di tanah bertekstur liat

Ghimire, R, P., Kayasatha, K, P., Devkota, N, R., dan Tiwari, M, R. 2013. Fodder productivity of Flemingia macrophylla under different planting density, defoliation management and fertilizer application. Nepal Agricultural Research Council, Kathmandu, Nepal

Harjadi, S. 2002. Pengantar Agronomi Edisi 2. PT Gramedia, Jakarta

Hindrawati, S. 2007. Koleksi Leguminosa di BPTU Sembawa. BPTU Sumbawa

Horne, P, M. 2001. Mengembangkan Teknologi Hijauan Makanan Ternak Bersama Petani Kecil. A CIAR and ACIAT. Manila.

Isahi, D, S. 2011. http://biologimediacentre.com/reproduksi-generatif-pada-tumbuhan/ diakses pada tanggal 14 April 2015

Jukema, J dan S. Danimihardja. 1997. Acacia glauca (L) Moench. In plant resources of south east asia. Forages. vol. 4. Prosea, Bogor.

Kusdianti. 2009. Tumbuhan Dikotil dan Monokotil. Kusdianti’s blog.www.kanisiusmedia.com. Diakses pada tanggal 14 April 2015

Lu, B. R. 1999. Taxonomy of the genus Oryza: historical perspective and current status. Mini review. IRRN 24.

Nio, S. A. dan. M. Ballo. (2010). Peranan air dalam perkecambahan biji. Jurnal Ilmiah Sains

Nurhasybi dan Kartiko (2003),. Teknik Silvikultur Jati Putih. 2005. Departemen Kehutanan, Badan Litbang Kehutanan Pusat Litbang Hutan Tanaman

Nursyamsi dan H. Tikupadang. 2014. Pengaruh komposisi biopotting terhadap pertumbuhan sengon laut di persemaian. Balai Penelitian Kehutanan Makassar, Makassar

Pardono. 2009. Pengaruh pupuk oraganik air kencing sapi dan pupuk kandang terhadap pertumbuhan dan hasil kacang panjang. Jurnal Agrosains 11(1): 11-14

Plengelly, B. C. danD. A. Eagles. (1995). Morphological and agronomic atributes of collection of the genus Teramnus. Genetic Resources Comunication Press

Diversity in the tropical legume genus Teramnus. Division of Tropical Crops and Pastures, CSIRO. Brisbane

Poetri, E dan Marsetyo. 2005. Daya kecambah beberapa jenis biji legum pohon tropik. Fakutas Pertanian Universitas Tadulako, Palu

Pratama, W, Y., M. Baskara, dan B. Guritno. 2014. Pengaruh ukuran biji dan kedalaman tanam terhadap pertumbuhan dan hasil tanaman jagung manis. Jurusan Budidaya Pertanian, Fakultas Pertanian, Universitas Brawijaya

Prawiradiputra, S, B, R. N. D. Purwantari., E. Sutedi dan Sumarto. 2004. Studi produksi leguminosa pohon Desmodium rensonii sebagai tanaman pakan ternak. Balai Penelitian Ternak, Bogor

Prihatman, K. 2000. Kacang tanah (Arachis hypogaea). Kantor deputi menegristek bidang pendayagunaan dan pemasyarakatan ilmu pengetahuan dan teknologi, Jakarta

Prohati. 2009. Keanekaragaman Tumbuhan Hayati Indonesia. http://www.proseanet.org/prohati2/browser.php?docsid=387. 27 Mei 2015

Rachmawati, Henny. 2002. Informasi Singkat Benih : Gmelina arborea Roxb. Bandung : Direktorat Perbenihan Tanaman Hutan

Restu, M. dan B. Mappangaja. 2005. Produksi polong dan biji tanaman gamal dari berbagai provenansi dengan pemupukan NPK. Jurusan Kehutunan, Universitas Hasanuddin

Ruchjaniningsih. 2009. Rejuvenasi dan karakterisasi morfologi 225 aksesi sorgum. BPTP Sulawesi Selatan

Rukmana, R. 1995. Bertanam Kacang Panjang. Kanisius, Yogyakarta

Rusli. 2010. Potensi biji turi untuk substitusi kedelai pada pembuatan kecap. Tanaman Rempah dan Industri. Volume 1(1j9): 63

Sitompul, S. M. dan B. Guritno. 1995. Analisis pertumbuhan tanaman. Gadjah Mada University Press, Yogyakarta

Soetrisno, Djoko. Bambang Suhartanto, Nafiatul Umami, dan Nilo Suseno. 2008. Bahan Ajar Ilmu Hijauan Makanan Ternak. Laboratorium Hijauan Makanan Ternak dan Pastura. Fakultas Peternakan. Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta.

Sudiyono. 2010. Penggunaan Na2Co3 untuk mengurangi kandungan HCN koro benguk pada pepmbuatan koro benguk goreng, Jurusan Teknologi Hasil Pertaniaan, Universitas Widyagama Malang, Malang

Sulistyowati, E. 2007. Uji aktivitas antioksidan biji lamtoro (Leucaena Leucocephala) secara in vitro. Fakultas MIPA, Universitas Negeri Yogyakarta, Yogyakarta

Surtinah. 2007. Menguji 5 macam pupuk daun dengan mengukur kadar total biji jagung manis. Jurnal ilmiah pertanian vol. 3 No. 2

Taufiq, T. M. M., dan I. Novo. 2004. Kedelai, Kacang Hijau dan Kacang Panjang. Absolut Press, Yogyakarta

Thoha, M, Y., A. Nazhri., dan Nursallya. 2008. Pengaruh suhu, waktu, dan konsentrasi pelarut pada ekstraksi minyak kacang kedelai sebagai penyedia vitamin E. Jurusan teknik kimia, Fakultas teknik Universitas Sriwijaya, Palembang.

Wada, F, S. 2009. Jenis Rumput-rumputan. www.ferdiyupwada.com. 27 Mei 2015

Wagner, Warren L. / Herbst, Derral R. / Sohmer, SH 1999. Manual dari tanaman berbunga Hawaii. Edisi revisi. Bernice P. Bishop Museum publikasi khusus. University of Hawaii Press / Bishop Museum Press, Honolulu. 1919 hal. (dua jilid).

Wawo, A. H. 2002. Studi morfologi dan anatomi hubungan akar cendana dengan akar inangnya. Fakultas MIPA, Universitas Indonesia, Jakarta

Wichman CRC, 2012. Canarium indicum. ntbg.org/plants diakses 27 Mei 2015.

Winarni, S., R. Judiwati., B. Prajogo, dan A. Hayati. 2011. Fraksi etanol 96% biji koro benguk sebagai peningkat kualitas spermatozoa mencit. Fakultas Kesehatan Masyarakat Universitas Diponegoro, Semarang

LAMPIRAN

BAB IV

GERMINASI

TINJAUAN PUSTAKA

Germinasi

Germinasi atau perkecambahan adalah berkembangnya struktur-struktur penting dari embrio benih dan menunjukkan kemampuannya untuk menghasilkan tanaman normal pada keadaan yang menguntungkan. Perkecambahan benih secara fisiologi adalah muncul dan berkembangnya struktur-struktur penting dari embrio benih sampai dengan akar menembus kulit benih. Proses metabolisme perkecambahan benih ditentukan oleh faktor genetik dan lingkungan. Faktor genetik yang berpengaruh terhadap perkecambahan benih adalah sifat dormansi dan komposisi benih. Faktor lingkungan yang berpengaruh terhadap perkecambahan benih adalah air, gas, suhu dan cahaya (Copeland dan Mc.Donald, 2001).

Tahap pertama suatu perkecambahan benih dimulai dengan proses penyerapan air oleh benih, melunaknya kulit benih dan hidrasi dari protoplasma. Tahap kedua dimulai dengan kegiatan-kegiatan sel dan enzim-enzim serta naiknya tingkat respirasi benih. Tahap ketiga merupakan tahap dimana terjadi penguraian bahan-bahan seperti karbohidrat, lemak dan protein menjadi bentuk-bentuk yang melarut dan ditranslokasikan ke titik-titik tumbuh. Tahap keempat adalah asimililasi dari bahan-bahan yang telah diuraikan tadi di daerah meristematik untuk menghasilkan energi baru, pembentukan komponen dan pertumbuhan sel baru. Tahap kelima adalah pertumbuhan dari kecambah melalui proses pembelahan, pembesaran dan pembagian sel-sel pada titik-titik tumbuh. Sementara penyerapan air oleh benih terjadi pada tahap pertama biasanya berlangsung sampai jaringan mempunyai kandungan air 40 sampai 60 % (atau 67 sampai 150 % atas dasar berat kering) dan akan meningkat lagi pada saat munculnya radikula sampai jaringan penyimpanan dan kecambah yang sedang tumbuh mempunyai kandungan air 70 sampai 90 %.(Sutopo, 2002).

Benih dikatakan dorman apabila benih tersebut sebenarnya hidup tetapi tidak berkecambah meskipun diletakkan pada keadaan yang umum dianggap memenuhi persyaratan bagi suatu perkecambahan (Sutopo, 2002). Dormansi merupakan fenomena fisiologis yang menunjukkan ketidakmampuan benih hidup untuk berkecambah pada kondisi optimum. Dormansi benih dapat berlangsung beberapa hari, beberapa minggu hingga beberapa bulan tergantung pada jenis tanaman. Dormansi dibagi menjadi dua yaitu dormansi primer dan dormansi sekunder. Dormansi primer adalah dormansi yang berasal dari dalam benih yang dihasilkan selama pembentukan benih, sedangkan dormansi sekunder merupakan dormansi yang terjadi karena faktor lingkungan. Penyebab dormansi antara lain embrio yang tidak sempurna, embrio belum masak, kulit benih tebal, kulit benih impermeabel, dan terdapat senyawa-senyawa yang menghambat perkecambahan (Copeland dan Mc.Donald, 2001).

Metode Germinasi

Terdapat beberapa cara agar dormansi dapat dipecahkan, yaitu perlakuan mekanis, perlakuan kimia, perendaman dengan air, pemberian temperatur tertentu, dan perlakuan cahaya. Perlakuan mekanis umum dipergunakan untuk memecah dormansi biji yang disebabkan oleh permeabilitas kulit biji baik terhadap air atau gas, resistensi mekanis kulit perkecambahan yang terdapat pada kulit biji. Perlakuan mekanis meliputi skarifikasi dan tekanan. Skarifikasi mencakup cara-cara seperti pengikiran, pengamplasan, pemotongan dan penusukan pada bagian tertentu dari biji, dan perlakuan goncangan (impaction) untuk biji yang memiliki sumbat gabus. Perlakuan tersebut bertujuan untuk melemahkan kulit biji yang keras sehingga lebih permeabel terhadap air (Sutopo, 2004).

Skarifikasi merupakan salah satu upaya pretreatment atau perlakuan awal pada benih yang ditujukan untuk mematahkan dormansi dan mempercepat terjadinya perkecambahan benih yang seragam (Schmidt, 2000). Perlakuan yang dapat digunakan untuk memecahkan tipe dormansi fisik menurut Sahupala (2007) adalah dengan teknik skarifikasi pada kulit benih yaitu dengan cara penusukan, penggoresan, pemecahan, atau pengikiran dengan bantuan pisau, jarum, kikir, kertas gosok, atau lainnya yang paling efektif untuk mengatasi dormansi fisik. Selain itu dapat juga dengan cara perendaman dengan air panas. Haryani (2005), menjelaskan bahwa tujuan dari skarifikasi ialah untuk melunakkan endokarp dan membuang zat penghambat.

Sampai saat ini belum banyak informasi tentang produksi benih Indigofera, terutama di Indonesia. Spesies Indigofera arrecta memiliki panjang polong 2 sampai 2,5 cm, berisi 4 sampai 8 biji (Orwa et al., 2009). Ukuran benih bervariasi, misalnya benih Indigofera hendecaphylla setiap 1000 biji bobotnya 20 gram, sedangkan Indigofera hirsuta setiap 1000 biji beratnya hanya 1,5 sampai 2,5 gram (Sunarno, 1997; Djarwaningsih, 1997). Produksinya per ha 100 sampai 300 kg, sedangkan untuk Indigofera arrecta 675 sampai 1200 kg per ha telah dilaporkan di India (Lemmens dan Cardon, 2005). Indigoferayang dibudidayakan di Jonggol, Kabupaten Bogor, Jawa Barat bisa memproduksi benih Indigofera sebanyak 20 sampai 30 kg per 3 minggu per ha. Faktor yang mempengaruhi hasil biji antara lain tanah, iklim, kegagalan penyerbukan, waktu panen. Sedangkan yang mempengaruhi kualitas benih yaitu cara panen, kekerasan biji, dormansi, pengemasan dan penyimpanan serta pemasaran (Hacker and Loch, 1997).

Biji sorgum di pedesaan pada umumnya digunakan sebagai pengganti beras atau jagung, sedangkan daun dan batangnya untuk pakan ternak, terutama saat paceklik. Paceklik pangan dan pakan sering terjadi di lahan kering terutama pada musim kemarau (Purnomohadi, 2006). Dajue dan Guangwei (2000) melaporkan hasil penelitiannya tentang beberapa varietas sorgum manis (Wray, Keller, dan Rio) di Beijing menghasilkan hijauan segar berturut-turut 106 ton per ha, 107 ton per ha, dan 82 ton per ha. Produksi biji berturut-turut 1426 kg per ha, 1960 kg per ha, dan 2866 kg per ha. Selanjutnya dilaporkan pula bahwa produksi hijauan sorgum manis 149% lebih tinggi daripada jagung dan 191% lebih tinggi daripada gandum.

Secara umum, biji sorgum dapat dikenali dengan bentuknya yang bulat dan terdiri dari tiga lapisan utama, yaitu kulit luar (8%), lembaga (10%), dan endosperma (82%). Ukuran bijinya kira-kira adalah 4.0 x 2.5 x 3.5mm, dan berat biji 100 butir berkisar antara 8 mg sampai 50 mg dengan rata-rata 28mg. Berdasarkan bentuk dan ukurannya, biji sorgum dapat digolongkan sebagai biji berukuran kecil (8 sampai 10 mg), sedang (12 sampai 24 mg), dan besar (25 sampai 35 mg). Kulit bijinya ada yang berwarna putih, merah,atau coklat (Andaris, 2013).

MATERI DAN METODE

Materi

Alat. Alat-alat yang digunakan dalam praktikum germinasi adalah cawan petri,glass beaker,termometer, amplas, potongan kuku, kain strimin dan oven.

Bahan. Bahan-bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah biji tarum (Indigofera arrecta), biji sorgum (Sorghum bicolor L. Moench), kapas, air (aquades), H₂SO₄ cair, dan air hangat.

Metode

Metode yang digunakan pada praktikum germinasi adalah biji tarum (Indigofera arecta) dan biji sorgum(Sorghum helepance) dilakukan beberapa skarifikasi yaitu dilukai dengan potongan kuku, diamplas, direndam ke dalam air hangat dengan suhu 80^oC selama 10 menit, direndam H₂SO₄selama 15 menit, dan di oven 55^oC selama 10 menit.

Skarifikasi biji dengan dilukai. Skarifikasi ini dilakukan dengan cara biji tarum dan sorgum diambil masing-masing sebanyak 3 biji. Masing-masing biji dilukai dengan cara menggores pada bagian yang tidak terdapat embrio dengan potongan kuku. Langkah berikutnya biji diletakkan ke dalam cawan petri yang telah diisi kapas dan dibasahi. Biji disemprot dengan air dan diamati pertumbuhannya selama 14 hari (2 minggu).

Skarifikasi biji dengan diamplas. Skarifikasi ini dilakukan dengan cara biji tarum dan sorgum diambil masing-masing sebanyak 3 biji. Masing-masing biji diamplas dengan cara menggosokkan pada bagian yang tidak terdapat embrio dengan kertas amplas. Langkah berikutnya biji diletakkan ke dalam cawan petri yang telah diisi kapas dan dibasahi. Biji disemprot dengan air dan diamati pertumbuhannya selama 14 hari (2 minggu).

Skarifikasi biji dengan perendaman H₂SO₄. Skarifikasi ini dilakukan dengan cara biji tarum dan sorgum diambil masing-masing sebanyak 3 biji. Masing-masing biji direndam dalam larutan H₂SO₄ selama 15 menit. Langkah berikutnya biji diangkat untuk diletakkan ke dalam cawan petri yang telah diisi kapas dan dibasahi. Biji disemprot dengan air dan diamati pertumbuhannya selama 14 hari (2 minggu).

Skarifikasi biji dengan perendaman air hangat. Skarifikasi ini dilakukan dengan cara biji tarum dan sorgum diambil masing-masing sebanyak 3 biji. Masing-masing biji direndam dalam air hangat dengan suhu 80^oC selama 10 menit. Langkah berikutnya biji diangkat untuk diletakkan ke dalam cawan petri yang telah diisi kapas dan dibasahi. Biji disemprot dengan air dan diamati pertumbuhannya selama 14 hari (2 minggu).

Skarifikasi biji dengan pengovenan. Skarifikasi ini dilakukan dengan cara biji tarum dan sorgum diambil masing-masing sebanyak 3 biji. Masing-masing biji dioven dengan suhu 55^oC selama 10 menit.Langkah berikutnya biji diangkat untuk diletakkan ke dalam cawan petri yang telah diisi kapas dan dibasahi. Biji disemprot dengan air dan diamati pertumbuhannya selama 14 hari (2 minggu).

HASIL DAN PEMBAHASAN

Pengamatan yang dilakukan pada biji tarum dan biji sorgum meliputi hari berkecambah dan keluarnya daun, tinggi tanaman, serta jumlah daun dengan berbagai perlakuan. Perlakuan yang dilakukan antara lain dilukai dengan potongan kuku, diamplas, direndam ke dalam air hangat dengan suhu 80^oC selama 10 menit, direndam H₂SO₄selama 15 menit, dan di oven 55^oC selama 10 menit.

Hari berkecambah dan keluarnya daun

Hasil pengamatan hari berkecambah dan keluarnya daun pertama pada biji tanaman sebagai berikut.

Tabel 3.1. Hari berkecambah dan keluarnya daun

No		Oven		Air Hangat		Amplas		Dilukai		H₂SO₄
No		I	S	I	S	I	S	I	S	I	S
1.	Berkecambah (Hari ke-)	–	4	–	–	–	–	–	–	–	–
2.	Keluar Daun (Hari ke-)	–	–	–	–	–	–	–	–	–	–

Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan, biji tarum tidak mengalami perkecambahan dan keluar daun. Biji sorgum mengalami perkecambahan pada hari ke-4 tetapi daunnya tidak keluar. Biji yang tidak mengalami perkecambahan dan keluar daunnya dapat disebabkan karena biji masih dalam keadaan dormansi dan penyiraman biji terlalu banyak.Biji yang disiram terlalu banyak dapat menyebabkan tumbuhnya jamur pada biji dan lingkungan sekitar. Hal tersebut disebabkan karena lingkungan yang lembab dapat memacu pertumbuhan jamur dan mencemari biji tersebut dengan racun yang dihasilkannya. Handajani dan Setyaningsih (2006), menyatakan bahwa aflatoxin diproduksi terutama oleh jamur Aspergillus flavus, A. Parasiticus, A. Nomius, A. Pseudotamarii dan A. Ochraceoroseus. Kontaminasi aflatoksin pada komoditi pertanian lebih sering terjadi di daerah beriklim tropik dan sub tropik karena suhu dan kelembabannya sesuai untuk pertumbuhan jamur.

Biji yang berkecambah tetapi daunnya tidak keluar dapat disebabkan karena kekurangan hormon giberelin. Hormon giberelin merupakan salah satu zat pengatur tumbuh yang berperan dalam berbagai proses fisiologi tanaman. Hal tersebut didukung oleh pendapat Revis (2014), yang menyatakan bahwa hormon giberelin berpengaruh terhadap pertumbuhan dengan merangsang aktivitas pembelahan sel pada daerah meristem batang dan kambium, merangsang aktivitas pembesaran sel sehingga dapat mempercepat tumbuhnya batang dan daun pada tanaman. Tumbuhan dapat mensintesis gibelerin-3 (GA₃) sendiri, akan tetapi jumlah yang dihasilkan sendiri oleh tumbuhan tersebut belum cukup untuk merangsang perkecambahan terutama pada biji berkulit keras. Menurut Sutopo (2004), faktor-faktor yang menentukan perkecambahan adalah faktor dalam dan faktor luar. Faktor dalam terdiri dari tingkat kemasakan benih, ukuran benih, dan dormansi benih, sedangkan faktor luar terdiri dari air, temperatur, oksigen, cahaya, dan media. Daryono et al., (2003), menambahkan bahwa curah hujan atau intensitas air sebagai faktor iklim yang paling berpengaruh terhadap pertumbuhan dan perkembangan biji terutama pada stadium perkecambahan dan pembungaan. Kebutuhan air akan bertambah sesuai dengan umur tanaman.

Skarifikasi merupakan salah satu proses yang dipercaya dapat mematahkan dormansi pada biji keras karena dapat meningkatkan imbibisi benih. Skarifikasi dilakukan dengan cara melukai benih sehingga terdapat celah tempat keluar masuknya air dan oksigen. Ketebalan dan kerasnya kulit biji dapat dikurangi dengan skarifikasi. Peresapan larutan zat perangsang pertumbuhan embrio pada benih yang diskarifikasi menjadi lebih mudah, sehingga daya pertumbuhan biji meningkat. Teknik skarifikasi kulit biji yang keras telah dilaksanakan untuk mempercepat perkecambahan biji dalam skala komersial (Soedjono dan Suskandari, 1996).

Skarifikasi dengan cara biji dilukai umumnya memiliki kecacatan tersendiri selama pertumbuhannya. Kecacatan ini dapat berupa calon bakal daun yang tidak utuh karena pelukaan benih terlalu dalam ataupun efeknya setelah benih dilukai seperti bakal daun sedikit keriting, kerdil, akar tidak tumbuh sempurna, berjamur bahkan menjadi busuk. Hal ini dapat terjadi karena pada benih yang dilukai, terdapat celah yang mana larutan kimia dapat langsung menuju endosperm benih (Widhityarini et al., 2013).

Perlakuan perendaman di dalam air panas bertujuan memudahkan penyerapan air oleh benih. Cara yang dilakukan yaitu dengan memasukkan benih ke dalam air panas pada suhu 40 sampai 70°C dan dibiarkan sampai air menjadi dingin selama beberapa waktu, kemudian benih ditiriskan untuk kemudian dikecambahkan. Perendaman adalah prosedur yang sangat lambat untuk mengatasi dormansi fisik, selain itu ada resiko bahwa benih akan mati jika dibiarkan dalam air sampai seluruh benih menjadi permeabel (Schimdt, 2000).

Pematahan dormansi dengan perendaman larutan H₂SO₄ 1% selama 10 menit merupakan pematahan dormansi yang dapat meningkatkan daya berkecambah benih. Hal ini disebabkan oleh adanya aktivitas asam sulfat yang membuat kulit benih menjadi lunak dan benih akan kehilangan lapisan yang permeabilitas terhadap gas dan air, sehingga metabolisme dapat berjalan dengan baik. Peningkatan permeabilitas yang disebabkan oleh larutnya sebagian komponen lignin oleh kulit benih. Air akan lebih mudah masuk ke dalam benih tersebut yang diperlukan untuk merangsang pertumbuhan embrio sehingga benih akan lebih mudah untuk berkecambah (Lensari, 2009).

Berdasarkan penelitian Fitriyani et al. (2013), menunjukkan bahwa kombinasi skarifikasi dengan cara diamplas maupun disayat dan direndam dalam air dengan suhu 60°C selama 10 menit berpengaruh optimal terhadap parameter persentase perkecambahan dan panjang akar, sedangkan pada parameter kecepatan perkecambahan yang paling optimal adalah kombinasi skarifikasi diamplas dan direndam dalam air bersuhu 40°C selama 15 menit, sehingga dapat disimpulkan bahwa skarifikasi dan suhu perendaman berpengaruh optimal terhadap parameter persentase perkecambahan, kecepatan perkecambahan dan panjang akar.

Tinggi tanaman

Biji Tarum (Indigofera arrecta). Berdasarkan pengamatan yang telah dilakukan, hasil pengukuran tinggi tanaman pada biji tarum adalah sebagai berikut.

Tabel 3.2. Tinggi biji tarum pada berbagai perlakuan

Hari ke-	Tinggi tanaman (cm)
Hari ke-	Dilukai	Diamplas	Direndam air hangat	Direndam H₂SO₄	Dioven 55°C
2	–	–	–	–	–
3	–	–	–	–	–
4	–	–	–	–	–
6	–	–	–	–	–
8	–	–	–	–	–
10	–	–	–	–	–
12	–	–	–	–	–
14	–	–	–	–	–

Bijitarum yang dikecambahkan pada berbagai perlakuan tidak menunjukkan adanya pertumbuhan sehingga tinggi tanaman tidak dapat diukur. Biji tarum tidak mengalami perkecambahan dapat disebabkan karena penyiraman yang terlalu banyak, kondisi lingkungan yang kurang sesuai untuk perkecambahan biji, maupun dari kualitas biji yang kurang baik. Hal ini diperkuat oleh pendapat Subekti et al.(2002), kondisi lingkungan yang lembab, tahap pemunculan berlangsung 4 sampai 5 hari setelah tanam, namun pada kondisi yang dingin atau kering, pemunculan tanaman dapat berlangsung hingga dua minggu setelah tanam atau lebih.

Kelembapan harus memadai yang secara relatif dibutuhkan sebagai tahap awal dari perkecambahan. Air membantu lapisan biji dan memfasilitasi pergerakan oksigen ke dalam biji sehingga air merupakan media dimana material berpindah dari satu bagian biji ke bagian lainnya yang dibutuhkan tumbuhan seperti pencernaan makanan dan pernafasan. Jika kecukupan kuantitas oksigen tidak terpenuhi, respirasi akan dikurangi dan energi yang diperlukan untuk menumbuhkan embrio berkurang. Jarak temperatur untuk perkecambahan bervariasi, namun perkecambahan biji yang terbaik terjadi pada suhu 65^oF sampai 83^oF (Johnson dan Laubengayer, 1995).Sutopo (2004), menyatakan bahwa beberapa jenis benih terkadang diberi perlakuan perendaman dalam air dengan tujuan memudahkan penyerapan air oleh benih. Dengan demikian kulit benih yang menghalangi penyerapan air menjadi lisis dan melemah. Selain itu juga digunakan untuk pencucian benih sehingga benih terbebas dari patogen yang menghambat perkecambahan benih.

Beberapa kasus perendaman ke dalam air hangat dapat menghambat pertumbuhan tanaman. Schmidt (2000) menjelaskan bahwa benih akan mati jika dibiarkan dalam air sampai seluruh benih menjadi permeable. Akan tetapi, banyak jenis tanpa dormansi atau dormansinya yang telah dipatahkan memperoleh manfaat dari perendaman dalam air, biasanya 12 sampai 24 jam sebelum penaburan. Perendaman dapaterangsang penyerapan menjadi lebih cepat. Bagaimanapun, perendaman yang berlangsung lama (contoh lebih dari 1 hari) harus dihindari karena mungkin menyebabkan anoksia. Bilamana perendaman diperlukan lebih lama, sebaiknya mengganti air secara teratur.

Perlakuan dengan direndam ke dalam H₂SO₄ tidak menunjukkan adanya pertumbuhan tanaman. Hal ini berbeda dengan literatur, menurut Sutopo (2004), menyatakan bahwa perlakuan dengan menggunakan bahan kimia sering digunakan untuk memecah dormansi pada benih. Tujuannya adalah menjadikan kulit benih atau biji menjadi lebih mudah untuk dimasuki air pada proses imbibisi. Larutan asam kuat seperti H₂SO₄ sering digunakan dengan konsentrasi yang bervariasi sampai pekat tergantung jenis benih yang diperlakukan, sehingga kulit biji menjadi lunak. Disamping itu pula larutan kimia yang digunakan dapat pula membunuh cendawan atau bakteri yang dapat membuat benih dorman. Schmidt (2000), menambahkan bahwa larutan asam sulfat pekat (H₂SO₄) menyebabkan kerusakan pada kulit biji dan dapat diterapkan baik pada legum dan non legum. Lamanya perlakuan larutan asam harus memperhatikan dua hal yaitu kulit biji atau pericarp dapat diretakkan untuk memungkinkan imbibisi dan larutan asam tidak mengenai embrio.

Kadar asam yang terlalu pekat yang digunakan saat praktikum dapat mempengaruhi proses perkecembahan. Hasil penelitian Muharni (2002) tentang pematahan dormansi dengan menggunakan H₂SO₄ 20 N menghasilkan persentase kematian pada benih tertinggi. Hal ini terjadi karena banyaknya benih yang pecah karena H₂SO₄. Jenis asam keras seperti H₂SO₄, dapat merusak kulit benih atau jaringan embrio sehingga terjadinya kemunduran metabolisme sehingga menyebabkan kematian benih. Pengaruh lama perendaman dalam larutan H₂SO₄ dapat juga menyebabkan kerusakan kulit benih dan jaringan embrio.

Perlakuan benih yang dioven 55^oC menunjukkan hasil bahwa tanaman tidak terjadi pertumbuhan sama sekali. Proses oven 55 ^oC mengakibatkan biji mengalami penurunan kadar air dalam keadaan kering udara. Sutopo (2004), menyatakan bahwa respirasi dalam benih sangat dipengaruhi oleh kadar air benih. Kadar air yang masih tinggi (lebih dari 8%) respirasi berjalan cepat dan juga memperbesar peluang terjadinya cendawan. Hal ini tidak menguntungkan bagi benih karena dapat menurunkan daya berkecambah benih. Biasanya respirasi yang terjadi pada benih merupakan fungsi dari suhu dan kadar air benih. Peningkatan respirasi akan menyebabkan penurunan cadangan karbohidrat sehingga kemampuan perkecambahan benih cepat menurun. Respirasi menyebabkan terbentuknya air dan CO₂ yang menyebabkan kelembaban di sekitar benih meningkat dan suhu bertambah sehingga memacu pertumbuhan jamur dan cendawan. McWilliams et al. (1999) mengemukakan bahwa benih jagung akan berkecambah jika kadar air benih pada saat di dalam tanah meningkat lebih dari 30%.

Grafik 4.1. Perbandingan tinggi tanaman Indigofera arrecta berbagai perlakuan

Biji Sorgum (Sorghum bicolor L. Moench). Berdasarkan pengamatan yang telah dilakukan, hasil pengukuran tinggi tanaman pada biji tarum adalah sebagai berikut.

Tabel 3.3. Tinggi biji sorgum pada berbagai perlakuan

Hari ke-	Tinggi tanaman (cm)
Hari ke-	Dilukai	Diamplas	Direndam air hangat	Direndam H₂SO₄	Dioven 55°C
2	–	–	–	–	–
3	–	–	–	–	–
4	–	–	–	–	–
6	–	–	–	–	–
8	–	–	–	–	–
10	–	–	–	–	–
12	–	–	–	–	–
14	–	–	–	–	–

Bijisorgum yang dikecambahkan pada berbagai perlakuan tidak menunjukkan adanya pertumbuhan sehingga tinggi tanaman tidak dapat diukur. Biji sorgum tidak mengalami perkecambahan dapat disebabkan karena penyiraman yang terlalu banyak, kondisi lingkungan yang kurang sesuai untuk perkecambahan biji, maupun dari kualitas biji yang kurang baik. Menurut Irwan (2006), bila biji tumbuh pada suhu tanah yang rendah (kurang dari 15°C), proses perkecambahan menjadi sangat lambat, bisa mencapai 2 minggu. Hal ini dikarenakan perkecambahan biji tertekan pada kondisi kelembaban tanah tinggi. Sementara pada suhu tinggi (lebih dari 30°C), banyak biji yang mati akibat respirasi air dari dalam biji yang terlalu cepat.

Biji yang dilukai tidak mengalami pertumbuhan. Hal tersebut berbeda dengan penelitian yang dilakukan Duval dan NeSmith (2000), dimana melukai benih atau membuang seluruh kulit benih yang menghambat terjadinya pertukaran gas akan meningkatkan perkecambahan dibandingkan biji tanpa dilukai.Schmidt (2000),menyatakan bahwa benih tanaman legum pada umumnya mengalami dormansi fisik yang disebabkan oleh morfologis kulit benih yang menyebabkan kulit benih bersifat impermeabel.

Perlakuan dengan direndam ke dalam air hangat tidak menunjukkan adanya pertumbuhan tanaman. Hal ini berbeda dengan penelitian yang dilakukan oleh Shanmugavalli et al. (2007),bahwa benih sorgum yang direndam dengan air selama 24 jam dapat mengeluarkan inhibitor yang larut dalam air sehingga dapat meningkatkan perkecambahan benih. Schmidth (2000), pencelupan sesaat ke dalam air hangat lebih baik dilakukan untuk mencegah kerusakan embrio. Cara yang umum dilakukan adalah dengan menuangkan benih dalam air yang mendidih dan membiarkannya untuk mendingin dan menyerap air selama 12 sampai 24 jam.

Perlakuan dengan direndam ke dalam H₂SO₄ tidak menunjukkan adanya pertumbuhan tanaman. Hal ini berbeda dengan pendapat Sutopo (2004), yang menyatakan bahwa perlakuan dengan menggunakan bahan kimia sering digunakan untuk memecah dormansi pada benih. Tujuannya adalah menjadikan kulit benih atau biji menjadi lebih mudah untuk dimasuki air pada proses imbibisi. Larutan asam kuat seperti H₂SO₄ sering digunakan dengan konsentrasi yang bervariasi sampai pekat tergantung jenis benih yang diperlakukan, sehingga kulit biji menjadi lunak. Disamping itu pula larutan kimia yang digunakan dapat pula membunuh cendawan atau bakteri yang dapat membuat benih dorman. Schmidt (2000), menyatakan bahwa larutan asam sulfat pekat (H₂SO₄) menyebabkan kerusakan pada kulit biji dan dapat diterapkan baik pada legum dan non legum. Lamanya perlakuan larutan asam harus memperhatikan dua hal yaitu kulit biji atau pericarp dapat diretakkan untuk memungkinkan imbibisi dan larutan asam tidak mengenai embrio. Shanmugavalli et al. (2007), menyatakan bahwa skarifikasi benih dengan asam sulfat dapat meningkatkan perkecambahan sampai batas tertentu.

Perlakuan benih yang dilakukan pengovenan 55 ^oC menunjukkan hasil bahwa tanaman tidak terjadi pertumbuhan sama sekali. Proses oven 55^oC mengakibatkan biji mengalami penurunan kadar air dalam keadaan kering udara. Hal tersebut berbeda dengan pendapat Sutopo (2004), yang menyatakan bahwa respirasi dalam benih sangat dipengaruhi oleh kadar air benih, pada kadar air yang masih tinggi (lebih dari 8%) respirasi berjalan cepat dan juga memperbesar peluang terjadinya cendawan. Hal ini tidak menguntungkan bagi benih karena dapat menurunkan daya berkecambah benih. Biasanya respirasi yang terjadi pada benih merupakan fungsi dari suhu dan kadar air benih. Peningkatan respirasi akan menyebabkan penurunan cadangan karbohidrat sehingga kemampuan perkecambahan benih cepat menurun. Respirasi menyebabkan terbentuknya air dan CO₂ yang menyebabkan kelembaban di sekitar benih meningkat dan suhu bertambah sehingga memacu pertumbuhan jamur dan cendawan.

Biji yang telah mendapat berbagai perlakuan tidak mengalami perkecambahan. Hal tersebut dapat disebabkan oleh beberapa faktor seperti faktor genetik dari biji tersebut dan faktor lingkungan. Hal tersebut didukung oleh pendapat Copeland dan Mc.Donald (2001), yang menyatakan bahwa proses metabolisme perkecambahan benih ditentukan oleh faktor genetik dan lingkungan. Faktor genetik yang berpengaruh terhadap perkecambahan benih adalah sifat dormansi dan komposisi benih. Faktor lingkungan yang berpengaruh terhadap perkecambahan benih adalah air, gas, suhu dan cahaya.

Grafik 4.2. Perbandingan tinggi tanaman Sorghum bicolor L. Moenchberbagai perlakuan

Jumlah daun

Biji Tarum (Indigofera arrecta). Hasil pengamatan jumlah daun pada biji tarum sebagai berikut.

Tabel 3.4. Jumlah daun Indigofera arrecta

Hari ke-	Jumlah daun
Hari ke-	Dilukai	Diamplas	Direndam air hangat	Direndam H₂SO₄	Dioven 55°C
2	–	–	–	–	–
3	–	–		–	–
4	–	–	–	–	–
6	–	–	–	–	–
8	–	–	–	–	–
10	–	–	–	–	–
12	–	–	–	–	–
14	–	–	–	–	–

Berdasarkan tabel 3 dapat diketahui bahwa jumlah daun biji tarum pada berbagai perlakuan menunjukkan tidak terdapat daun yang tumbuh.. Jumlah daun menjadi penentu utama kecepatan pertumbuhan. Biji yang dikecambahkan tidak mengalami pertumbuhan, sehingga tidak ada daun yang keluar. Hal tersebut dapat disebabkan karena penyiraman yang dilakukan terlalu banyak, sehingga biji menjadi busuk dan mati. Sutopo (2002), menyatakan pendapat yang sama bahwa benih mempunyai kemampuan berkecambah pada kisaran air tertentu. Kondisi media yang terlalu basah akan dapat menghambat aerasi dan merangsang timbulnya penyakit serta busuknya benih karena cendawan atau bakteri. Penyerapan air oleh benih dipengaruhi oleh sifat benih itu sendiri terutama kulit pelindungnya dan jumlah air yang tersedia pada media di sekitarnya, sedangkan jumlah air yang diperlukan bervariasi tergantung kepada jenis benihnya, dan tingkat pengambilan air turut dipengaruhi oleh suhu.

Faktorlain yang mempengaruhi pertumbuhan dan jumlah daun adalah cahaya, oksigen, suhu, dan medium yang digunakan. Khumaida (2002), menyatakan bahwa morfologi daun yang lebar dan tipis diperlukan pada kondisi lingkungan cahaya kurang untuk dapat menangkap cahaya sebanyak mungkin dengan cahaya yang direfleksikan serendah mungkin. Peningkatan luas daun memungkinkan peningkatan luas bidang tangkapan dan juga menyebabkan daun menjadi lebih tipis karena sel-sel palisade hanya terdiri dari satu atau dua lapis.

Pertumbuhan daun dapat dikelompokkan ke dalam tiga tahap yaitu fase perkecambahan, saat proses imbibisi air yang ditandai dengan pembengkakan biji sampai dengan sebelum munculnya daun pertama; fase pertumbuhan vegetatif, yaitu fase mulai munculnya daun pertama yang terbuka sempurna sampai tasseling dan sebelum keluarnya bunga betina (silking), fase ini diidentifiksi dengan jumlah daun yang terbentuk; dan fase reproduktif, yaitu fase pertumbuhan setelah keluarnya bunga betina (silking) sampai masak fisiologis (Campbell et al., 2003).

Grafik 4.3. Grafik perbandingan jumlah daun berbagai perlakuan

Biji Sorgum (Sorghum bicolor L. Moench). Hasil pengamatan jumlah daun pada biji sorgum sebagai berikut.

Tabel 3.5. Jumlah daun Sorghum bicolor L. Moench

Hari ke-	Jumlah daun
Hari ke-	Dilukai	Diamplas	Direndam air hangat	Direndam H₂SO₄	Dioven 55°C
2	–	–	–	–	–
3	–	–		–	–
4	–	–	–	–	–
6	–	–	–	–	–
8	–	–	–	–	–
10	–	–	–	–	–
12	–	–	–	–	–
14	–	–	–	–	–

Berdasarkan hasil praktikum yang terdapat pada tabel 4, dapat diketahui bahwa tidak terjadi pertumbuhan daun biji sorgum pada berbagai perlakuan. Sutopo (2004), menyatakan bahwa energi untuk perkecambahan merupakan hasil asimilasi dari bahan-bahan seperti karbohidrat, lemak dan protein, yang kemudian ditranslokasikan ke titik-titik tumbuh sehingga terjadi perkecambahan dan pertumbuhan. Sementara itu daun belum dapat berfungsi sebagai organ untuk fotosintesis, maka pertumbuhan kecambah sangat tergantung pada persediaan makanan yang ada dalam benih. Oleh karena itu, benih ada yang cepat berkecambah tetapi strukturnya tidak sempurna, sehingga pertumbuhan kecambah selanjutnya terhambat.

Faktor yang mempengaruhi pertumbuhan biji sorgumdalah air, oksigen, cahaya, suhu, dan medium yang digunakan. Biji yang tidak tumbuh dapat disebabkan karena oksigen dalam lingkungan sekitar kurang sehingga proses respirasi terganggu. Hal tersebut dapat disebabkan karena kondisi lingkungan yang lembab karena penyiraman yang terlalu banyak.Johnson dan Laubengayer (1995), menyatakan hal yang sama yaitu jika kecukupan kuantitas oksigen tidak terpenuhi, respirasi akan dikurangi dan energi yang diperlukan untuk menumbuhkan embrio berkurang.

Air berfungsi untuk melunakan kulit biji, melarutkan cadangan makanan, sarana transportasi makanan terlarut, dan hormone ke daerah meristematik (titik tumbuh) serta bersama dengan hormon membangun pemanjangan dan pengembangan sel. Cahaya merupakan faktor pengendali pertumbuhan dan perkembangan tumbuhan terutama berperan dalam proses berlangsungnya fotosintesis. Suhu berperan dalam mengontrol perkecambahan dan pertumbuhan vegetatif. Sehubungan dengan perkecambahan proses imbibisi berlangsung lebih cepat pada suhu yang lebih tinggi (Sudjadi dan Laila, 2007). Biji yang berada dalam intensitas cahaya rendah terjadi pengurangan lapisan palisade yang lebih besar akibat cekaman naungan, sehingga menyebabkan daun menjadi lebih tipis. Perubahan karakter tersebut diduga merupakan bentuk mekanisme penghindaran terhadap cahaya rendah (Khumaida, 2002; Sopandie et al., 2003).

Grafik 4.4. Grafik perbandingan jumlah daun berbagai perlakuan

KESIMPULAN

Berdasarkan hasil pengamatan praktikum germinasi biji tarum (Indigofera arrecta) dan biji sorgum (Sorghum bicolor L. Moench) yang diberi lima perlakuan berbeda yaitu dilukai, diamplas, direndam air hangat, direndam H₂SO₄, dan dioven 55°C, dapat disimpulkan bahwa biji tarumtidak mengalami perkecambahan dan biji sorgum berkecambah pada hari ke-4 tetapi pertumbuhannya terhambat.Kelima perlakuan pada biji tidak menunjukkan dampak terhadap perkecambahan biji dan pertumbuhan daun secara nyata. Faktor-faktor yang mempengaruhi perkecambahan adalah ketersediaan air, oksigen, suhu, cahaya dan medium yang digunakan.

DAFTAR PUSTAKA

Andaris, A. M. 2013. Distribusi bahan kering beberapa genotipe sorgum (Sorghum bicolor (L.) Moench) yang ditumpangsarikan dengan ubikayu (Manihot esculenta Crantz.). Skripsi. Fakultas Pertanian, Universitas Lampung. Bandar Lampung.

Campbell NA, Reece JB, Mitchell LG. 2003. Biologi. Jilid ke 2 Jakarta. Penerbit Erlangga. Jakarta.

Copeland, L. O. Dan M. B. McDonald. 2001. Seed Science and Technology 4^th edition. Kluwer Academic Publisher. London.

Dajue, L. dan S. Guangwei. 2000. Sweet Sorghum A Fine Forage Crop for the Beijing Region, China. Paper Presented inFAO e-Conference on Tropical Silage, 1 Sept− 15 Dec 1999 in FAO, 2000. Vol. 161: 123−124.

Daryono, D.K. Suanda, dan I G.A.M.Sri Agung. 2003. Evaluasi Zone Agroklimat Oldeman Daerah Bali Berdasarkan Pemutahiran Data Curah Hujan Hingga Tahun 2000. Jurnal Agritrop, Jurnal Ilmu-Ilmu Pertanian, Fakultas Pertanian Universitas Udayana. Vol. 22 No. 3 Sept. 2003.

Djarwaningsih T. 1997. lndigofera hendecaphylla Jacq; lndigofera hirsute L. Backhuys Publishers, Leiden. Netherlands.

Duval, J. R. dan D. S. NeSmith. 2000. Treatment with hydrogen peroxide and seedcoat removal or clipping improve germination of ‘Genesis’ triploid watermelon. HortScient. 35 (1) : 85 – 86.

Fitriyani, S. A., E. S. Rahayu, dan N. A. Habibah. 2013. Pengaruh skarifikasi dan suhu terhadap pemecahan dormansi biji aren (Arenga pinnata (Wurmb) Merr. 2 (2) : 85-91.

Hacker, J.B. dan D.S. Loch. 1997. Tropical Forage Seed Poduction :Producers’ views and Research Opportunity. www.intemationalgrassland.org.Diakses tanggal 16 Mei 2015.

Handajani, N. S. dan R. Setyaningsih. 2006. Identifikasi jamur dan deteksi aflatoksin B1 terhadap petis udang komersial. Biodiversitas. 7 (3) : 212-215.

Haryani, N. 2005. Pengujian Viabilitas Benih Selama Periode Konservasi dan Upaya Pematahan Dormansi untuk Mempercepat Pengecambahan Benih Kelapa Sawit (Elaeis guineensis Jacq.). Skripsi. Departemen Budidaya Pertanian. Fakultas Pertanian. Institut Pertanian Bogor. Bogor.

Irwan, Aep Wawan. 2006. Budidaya Tanaman Kedelai (Glycine max (L.) Merill). Skripsi. Jurusan Budidaya Pertanian Fakultas Pertanian Universitas Padjadjaran. Jatinangor.

Johnson, W. H. dan R. A. Laubengayer. 1995. Biology. Revised Edition. Holt, Rinehart and Winston. New York.

Khumaida N. 2002. Studies on adaptability of soybean and upland rice to shade stress. Disertasi. The University of Tokyo, Tokyo.

Lemmens, R.H.M.J. dan D. Cardon. 2005. Indigofera arrecta Hochst. Ex A. Rich. [Internet] Record from Protabase. Jansen, P. C. M. & Cardon, D. (Eds.). PROTA (Plant Resources of Tropical Africa). Wageningen, Netherlands.

Lensari, D. 2009. Pengaruh pematahan dormansi terhadap kemampuan perkecambahan benih angsana (Pterocarpus indicus Will). Skripsi. Departemen Silvikultur, Fakultas Kehutanan, Institut Pertanian Bogor. Bogor.

McWilliams, D.A., D.R. Berglund, and G.J. Endres. 1999. Corn growth and management quick guide.www.ag.ndsu.edu. Diakses tanggal 17 Mei 2015.

Muharni S. 2002. Pengaruh Metode Pengeringan dan Perlakuan PematahanDormansi Terhadap Viabilitas Benih Kayu Afrika (Maesopsis eminii Engler.). [Skripsi]. Bogor: Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor.

Orwa C., A Mutua, R . Kindt, R. Jamnadass, and A . Simons . 2009. Agroforestree Database : a tree reference and selection guide version 4.0. http ://www .woridagroforestry .org/af/treedb (akses Mei 2015).

Purnomohadi, M. 2006. Potensi penggunaan beberapa varietas sorgum manis (Sorghum bicolor (L.) Moench) sebagai tanaman pakan. Berk. Penel. Hayati. 12 : 41 – 44.

Revis, A. S. R. A. 2014. Pengaruh hormon giberelin (GA₃) terhadap daya kecambah dan vigoritas Calopogonium caeruleum. Biospedes. 7 (1) : 29-33.

Sahupala, A. 2007. Teknologi Benih. Pelatihan Penanaman Hutan di Maluku dan Maluku Utara. Departemen Kehutanan. Ambon.

Schmidt, L. 2000. Pedoman Penanganan Benih Tanaman Hutan Tropis dan Subtropis. Diterjemahkan oleh Direktorat Jendral Rehabilitasi Lahan dan Perhutanan Sosial Departemen Kehutanan. PT Gramedia. Jakarta.

Shanmugavalli, M., P. R. Renganayaki, dan C. Menaka. 2007. Seed dormancy and germination improvement treatments in fodder sorghum. SAT eJournal. 3 (1) : 1 – 3.

Soedjono, S. dan K. Suskandari. 1996. Peranan asam gibberellat dan perentasan kulit biji terhadap perkecambahan biji palem raja dan palem kuning. Jurnal Hortikultura. Vol. 6, No. 4.

Sopandie D., M. A. Chozin, S. Sastrosumarjo, T. Juhaeti, Sahardi. 2003. Toleransi padi gogo terhadap naungan. Hayati. 10: 71-75.

Subekti, N. Syafruddin, A., Efendi, R, Sunarti, S. 2002. Morfologi Tanaman dan Fase Pertumbuhan Jagung. Berita Puslitbang.

Sudjadi, dan Laila, S. 2007. Biologi 3A. Sains dalam kehidupan. Yudhistira. Surabaya.

Sunarno, B. 1997. Indigofera suffruticosa Miller. Backhuys Publishers, Leiden. Netherlands.

Sutopo, L. 2002. Teknologi Benih. Rajawali. Jakarta.

Sutopo, L. 2004. Teknologi Benih. PT Raja Grafindo Persada. Jakarta.

Widhityarini, D., M. W. Suyadi, dan A. Purwantoro. 2013. Pematahan dormansi benih tanjung (Mimusops elengi L.) dengan skarifikasi dan perendaman kalium nitrat. Vegetalika. 2 (1) : 1-12.

LAMPIRAN

BAB V

PERTUMBUHAN TANAMAN

Tinjauan Pustaka

Pertumbuhan Tanaman

Pertumbuhan merupakan proses pertambahan volume dan jumlah sel yang mengakibatkan bertambah besarnya organisme. Pertambahan jumlah sel terjadi karena adanya pembelahan mitosis, dan bersifat irreversiabel artinya organisme yang tumbuh tidak akan kembali ke bentuk semula. Pertambahan jumlah sel terjadi karena adanya pembelahan mitosis. Pertumbuhan dan perkembangan merupakan hasil interaksi antara faktor-faktor yang terdapat dalam tubuh organisme, seperti sifat genetika yang ada dalam gen dan hormon yang merangsang pertumbuhan (Kimball, 1996).

Pola pertumbuhan tumbuhan tergantung pada letak meristem. Meristem apikal berada pada ujung akar dan pada pucuk tunas, menghasilkan sel-sel bagi tumbuhan untuk tumbuh memanjang. Pemanjangan ujung akar dan pucuk tunas yang disebut dengan pertumbuhan primer, yang memungkinkan akar membuat jalinan di dalam tanah dan tunas untuk meningkatkan pemaparannya terhadap cahaya matahari dan karbon dioksida. Tumbuhan juga terjadi pertumbuhan secara sekunder yaitu adanya aktivitas penebalan secara progresif pada akar dan tunas yang terbentuk sebelumnya oleh pertumbuhan primer (Campbell et al., 2003)

Suhu yang dikehendaki tanaman kedelai antara 21⁰C sampai 34⁰C, akan tetapi suhu optimum bagi pertumbuhan tanaman kedelai 23⁰C sampai 27⁰C. Pada proses perkecambahan benih kedelai memerlukan suhu yang cocok sekitar 30⁰C. Saat panen kedelai yang jatuh pada musim kemarau akan lebih baik dari pada musim hujan, karena berpengaruh terhadap waktu pemasakan biji dan pengeringan hasil (Irwan, 2006). Waktu tanaman kedelai masih sangat muda, atau setelah fase menjadi kecambah dan saat keping biji belum jatuh, batang dapat dibedakan menjadi dua. Bagian batang di bawah keping biji yang belum lepas disebut hipokotil, sedangkan bagian di atas keping biji disebut epikotil. Batang kedelai tersebut berwarna ungu atau hijau (Bertham, 2002).

Soetrisno et al., (2008), mengatakan bahwa tahapan pertumbuhan secara umum meliputi seedling, penguatan (establishmental), vegetatif, pemanjangan batang bunga, dan reproduktif. Seedling merupakan waktu yang diperlukan dari perkecambahan sampai pembentukan tiller atau cabang aksiler. Penguatan (establishmental) adalah periode transisi saat tanaman muda membentuk daun dan tunas, nodus dan akar sekunder. Fase vegetatif adalah fase produksi daun, batang, stolon dan rhizoma tanpa atau dengan sedikit batang bunga. Tahapan ini meliputi periode establishmental bagi tanaman yang baru ditanam tapi juga merepresentasikan waktu dari pertumbuhan kembali setelah musim kemarau sampai sejumlah batang bunga mulai muncul. Batang mempunyai primordial bunga meningkat tingginya atau panjangnya seiring pemanjangan internodus. Fase reproduksi merupakan fase produksi bunga dan biji.

Rhizobium merupakan sejenis bakteri yang mampu mengadakan kerjasama dengan tananman legume dengan membentuk bintil-bitil akar dan mampu memfiksasi nitrogen bebas di udara sehingga bisa diserap oleh tanaman legume. Kemampuan tanaman kedelai menggunakan N yang bersal dari tanah, pupuk, dan udara melalui simbiosis dengan bakteri Rhizobium japonicum. Rhizobium japonicum yang diinokulasi pada benih berperan untuk memenuhi sepertiga kebutuhan nitogen, amonium yang dihasilkan oleh Rhizobium tersebut dapat dimanfaatkan oleh tanaman, sebaliknya Rhizobium mengambil karbohidrat, protein, dan oksigen yang dihasilkan tanaman untuk hidup dan berkembang biak (Suharno et al., 2009).

Glycine max (kacang kedelai)

Adisarwanto (2005) mengemukakan bahwa, klasifikasi tanaman kedelai (Glycine max) adalah sebagai berikut:

Kingdom : Plantae

Divisi : Spermatophyta

Kelas : Magnoliophyta

Sub kelass : Rosidae

Ordo : Fabales

Famili : Fabaceae

Genus : Glycine

Spesies : Glycine max

Tanaman kedelai mempunyai akar tunggang yang membentuk akar-akar cabang yang tumbuh menyamping tidak jauh dari permukaan tanah. Jika kelembaban tanah turun, akar akan berkembang lebih ke dalam agar dapat menyrap unsur hara dan air (Sumarno, 1997). Susunan akar kedelai pada umumnya sangat baik. Pertumbuhan akar tunggang lurus masuk kedalam tanah dan mempunyai banyak akar cabang. Pada akar – akar cabang banyak terdapat bintil – bintil akar berisi bakteri Rhizobium japonicum, yang mempunyai kemampuan mengikat zat lemas bebas (N2) dari udara yang kemudian dipergunakan untuk menyuburkan tanah (Andrianto, 2004).

Materi dan Metode

Materi

Alat. Alat yang digunakan pada praktikum pertumbuhan tanaman meliputi polybag, penggaris, alat tulis dan lembar kerja.

Bahan. Bahan yang digunakan pada praktikum pertumbuhan tanaman meliputi biji kedelai, gula, inokulum Rhizobium, air, sekam, pupuk daun, dan tanah.

Metode

Metode yang dilakukan pada pertumbuhan tanaman adalah mengisi polybag dengan tanah yang telah dicampur dengan sekam dan pupuk kompos. Perbandingan antara sekam, tanah, dan pupuk daun adalah 1:2:1. Perlakuan pada biji kedelai ada dua yaitu biji kedelai yang diberi tambahan inokulum dan gula, dan tanpa diberi inokulasi. Biji kedelai yang diberi inokulasi awalnya dimasukan dalam air yang berisi air dan inokulum Japonicum, kemudian langsung ditanam dan juga sebaliknya pada biji kedelai yang tidak diberi inokulasi. Buat tiga titik tanam sehingga membentuk segitiga, kemudian dilubangi kira-kira 3 cm pada masing-masing titik, setiap lubang ditanaman 3 buah biji kedelai (Glycine max). Proses penanaman biji kedelai ini kemudian setiap 2 kali sehari dilakukan penyiraman dan pengukuran tinggi tanaman serta jumlah daun. Pemanen dari pertumbuhan yang diakukan adalah dengan mencabut tanaman kedelai (Glycine max) kemudian dilihat jumlah nodul akarnya.

Hasil dan Pembahasan

Praktikum pertumbuhan tanaman bertujuan untuk mengetahui perbedaan kecepatan pertumbuhan tanaman Kedelai (Glysine Max) yang diberi inokulasi dan tanpa diberi inokulasi.

Tinggi tanaman

Berdasarkan praktikum pertumbuhan tanaman yang telah dilakukan, didapatkan data tinggi tanaman dari tanaman kedelai (Glycine max) sebagai berikut :

Tabel 5.1. Tinggi tanaman

Hari ke	Tinggi tanaman (cm)
Hari ke	Inokulasi	Tanpa inokulasi
1	0	0
2	0	0
3	0	0
4	0,5	0
5	4	0
6	6,5	2
7	8,5	3,5
8	10,5	5
9	13	9
10	15	10
11	16	11
12	17	12
13	20	15
14	21	16
15	22	19
16	25	20
17	27	20
18	29	22
19	30	24
20	31	24,5
21	33	26
22	40	31
23	42	32
24	45	33
25	46	36
26	48	44
27	49	55
28	49	58
29	49	63
30	49	63

Berdasarkan data yang diperoleh dari pertumbuhan tanaman yang diberi tambahan inokulum Rhizobium dan tidak diberi tambahan inokulum Rhizobium, terdapat perbedaan yang sangat berbeda pada awal pertumbuhan hari ke 5 yang pertumbuhan tanaman kedelai yang diberi inokulum dibandingkan dengan tanaman yang tidak diberi inokulum. Perbedaan tersebut dapat disebabkan karena beberapa faktor misalnya suhu, kelembaban lingkungan sekitar, kedalaman biji saat menanam, dan juga inokulum yang diberikan. Inokulum dapat mempercepat fiksasi nitrogen dengan membentuk bintil-bintil akar atau nodul, sehingga pertumbuhan tanaman tersebut lebih cepat jika dibandingkan dengan tanaman yang tidak diberi tambahan inokulum Rhizobium.

Trustinah (1998), mengatakan bahwa ketika kondisi tanah yang subur atau mengandung banyak nutrisi dan ketersediaan air yang cukup, menyebabkan pertumbuhan vegetatifnya menjadi subur. Berdasarkan praktikum dibanding dengan literatur pertumbuhan tanah yang digunakan ketika praktikum adalah sama subur, namun pengaruh pada pemberian Rhizobium yang berbeda. Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan diperoleh data grafik sebagai berikut.

Grafik 5.1. Perbandingan Tinggi Tanaman

Berdasarkan data grafik diatas pertumbuhan tinggi tanaman sangat signifikan pada pertumbuhan yang yang tanpa diberi inokulasi. Penelitian yang dilakukan oleh Suharjo (2001) menyatakan bahwa tanaman kedelai yang diberi isolat Rhizobium dapat meningkatkan tinggi tanaman. Berdasarkan praktikum dibanding hasil praktikum tidak sesuai.

Pertumbuhan tanaman dipengaruhi oleh media tanaman, genetik, unsur hara, sirnar matahari, kelembabapn. Faktor genetis sangat mempengaruhi kemampuan tanaman untuk memberikan produksi yang tinggi serta sifat penting lainnya seperti kualitas hasil, ketahanan terhadap serangan hama, dan penyakit, dan kekeringan. Faktor lingkungan yang mempengaruhi antara lain adalah temperatur, kelembaban, sinar matahari, susunan atmosfir, struktur tanah, reaksi tanah (pH), faktor biotis, dan penyedia unsur hara (Utri et al., 2013).

Berdasarkan praktikum dibanding dengan literatur penanaman tanaman kedelai berada di dalam rumah kaca yang memungkinkan tidak ada kontaminan air hujan dan cahaya matahari tidak dapat terlalu masuk, sehingga faktor tersebut dapat mempengaruhi pertumbuhan. Jumlah air penyiraman yang berbeda dapat menyebabkan kelembaban dan unsur hara pada tanah, sehingga perbedaan jumlah air pada tanaman yang diberi inokulum dan yang tidak dapat menyebabkan perubahan pada tinggi tanaman. Perbedaan serangan gulma pada tanah juga dapat mempengaruhi pertumbuhan tanaman, karena jumlah gulma yang banyak dapat menyebabkan persaingan nutrien tanah antara tanaman kedelai dengan gulma. Rukmana et al., menjelaskan bahwa, gulma merupakan saingan tanaman kedelai dalam hal kebutuhan air, unsur hara, sinar matahari, dan juga kemungkinan menjadi tanaman inang hama atau penyakit.

Soetrisno et al., (2008) menyatakan bahwa, tahapan pertumbuhan secara umum meliputi seedling, penguatan (establishmental), vegetatif, pemanjangan batang bunga, dan reproduktif. Seedling merupakan waktu yang diperlukan dari perkecambahan sampai pembentukan tiller atau cabang aksiler. Penguatan (establishmental) adalah periode transisi saat tanaman muda membentuk daun dan tunas, nodus dan akar sekunder. Fase vegetatif adalah fase produksi daun, batang, stolon dan rhizoma tanpa atau dengan sedikit batang bunga. Tahapan ini meliputi periode establishmental bagi tanaman yang baru ditanam tapi juga merepresentasikan waktu dari pertumbuhan kembali setelah musim kemarau sampai sejumlah batang bunga mulai muncul. Batang mempunyai primordial bunga meningkat tingginya atau panjangnya seiring pemanjangan internodus. Fase reproduksi merupakan fase produksi bunga dan biji.

Jumlah daun

Berdasarkan praktikum pertumbuhan tanaman yang telah dilakukan, didapatkan data jumlah daun dari tanaman kedelai (Glycine max) sebagai berikut :

Tabel 2. Jumlah Daun

Hari ke	Jumlah Daun
Hari ke	Inokulasi	Tanpa inokulasi
1	0	0
2	0	0
3	0	0
4	0	0
5	4	0
6	4	0
7	4	0
8	4	0
9	4	4
10	7	5
11	7	5
12	11	7
13	11	7
14	11	7
15	12	8
16	12	8
17	12	9
18	12	10
19	12	11
20	12	11
21	14	11
22	17	11
23	17	14
24	17	14
25	20	15
26	23	17
27	26	20
28	26	20
29	32	20
30	41	20

Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan daun mulai muncul pada tanaman kedelai yang diberi inokulum adalah hari kelima sedangkan tanaman yang tidak diberi inokulum tumbuh daun pada hari kelima. Peningkatan jumlah daun pada tanaman kedelai yang diberi Rhizobium memiliki jumlah yang sangat berbeda. Jumlah total daun pada akhir masa penanaman selama 30 hari pada tanaman yang diberi inokulum adalah 41 helai sedangkan pada tanaman yang tanpa diberi inokulum hanya 20. Berdasarkan praktikum diperoleh grafik pertumbuhan daun sebagai berikut.

Grafik 5.2. Perbandingan Jumlah Daun

Hanum (2010), proses fotosintesis menghasilkan metabolit primer yang dipakai untuk metabolisme tanaman sehingga terjadi pertumbuhan dan perkembangan, disamping itu, metabolit primer digunakan untuk menyusun metabolit sekunder yang mendukung pada proses adaptasi dan proteksi tanaman. Suatu aspek yang sangat penting dalam proses pertumbuhan tanaman dalam penyediaan substrat. Substrat yang digunakan untuk membentuk bahan baru tanaman yang sebagian besar adalah karbohidrat, diperoleh dari proses fotosintesis pada organ tanaman yaitu daun. Hara didalam tanah juga berpengaruh terhadap jumlah daun (Suhartono, et al. 2008). Berdasarkan literatur dibanding dengan hasil praktikum bahwa unsur hara dalam tanah sudah mencukupi.

Lakitan (2004) menyatakan bahwa, peranan unsur hara mikro maupun unsur har makro sangat penting dalam pertumbuhan tanaman, dimana apabila unsur hara yang tersedia dalam tanaman kurang dari jumlah yang dibutuhkan oleh tanaman maka tanaman akan terganggu metabolismenya sehingga mengakibatkan pertumbuhan akar, batang, dan daun menjadi terhambat dan mengakibatkan tanaman akan menjadi kerdil dan lama kelamaan akan mengalami nekrosis dan klorosis pada daun (defisiensi unsur N). Berdasarkan hasil praktikum dibanding dengan literatur tanah yang digunakan dalam penanaman tanaman kedelai tidak mengalami defiensi unsur N, dan tanaman kedelai dapat melakukan simbiosis dengan unsur N didalam tanah sehingga tidak mengalami defisiensi N.

Jumlah Nodul

Berdasarkan praktikum diperoleh data jumlah nodul antara tanaman yang diberi inokulasi dan tanpa inokulasi disajikan dalam tabel sebagai berikut.

Tabel 5.2. Jumlah Nodul Tanaman

Kelompok	Tanggal	Jumlah nodul	Keterangan
3	19 Maret 2015	Banyak	Besar, bulat
18	20 Maret 2015	Sedikit	Kecil, b ulat

Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan tanaman kedelai yang diberi inokulum Rhizobium memiliki jumlah nodul dan bentuknya besar dan bulat jika dibanding dengan tanaman kedelai yang tidak diberi inokulum. Menurut Suharno et al., (2009), inokulasi Rhizobium merupakan penambahan inokulum bakteri Rhizobium ke dalam tanah melalui biji kedelai. Kehadiran strain Rhizobium yang serasi merupakan syarat utama untuk menjamin terbentuknya bintil akar yang efektif. Adanya bintil akar efektif yang dapat menyediakan unsur hara N dalam mendukung pertumbuhan tanaman. Dimana Rhizobium sudah mulai menginfeksi akar, sejak terbentuknya akar sehingga bintil akar yang terbentuk dapat mengikat nitrogen dari udara. Suharno et al., (2009) melaporkan bahwa pemberian inokulum RhizobiIum dapat meningkatkan jumlah bintil akar. Secara umum inokulasi dilakukan dengan memberikan biakan Rhizobium Japonicum ke dalam tanah agar bakteri ini berasosiasi dengan tanaman kedelai untuk mengikat nitrogen bebas dari udara (Suharjo, 2001).

Hal tersebut sesuai dengan pernyataan Adisarwanto (2005) yang menyatakan bahwa sejak terbentuknya akar, bakteri Rhizobium melakukan proses pembentukan bintil akar yaitu sekitar 4 sampai 5 hari setelah tanam dan bintil akar dapat mengikat nitrogen dari udara dalam mencukupi kebutuhan unsur hara N terhadap pertumbuhan tanaman. Akar kedelai mulai muncul dari belahan kulit biji yang muncul di sekitar misofil. Calon akar tersebut kemudian tumbuh dengan cepat ke dalam tanah, sedangkan kotiledon yang terdiri dari dua keping akan terangkat ke permukaan tanah akibat pertumbuhan yang cepat dari hipokotil.

Lakitan (2004) menyatakan bahwa, ukuran tinggi tanaman kedelai yang baik untuk diproduksi adalah 65 cm. Berdasarkan hasil praktikum tinggi tanaman yang dipelihara kurang dari 65 cm sehingga ukuran tanaman termasuk kerdil. Lakitan (2004) menyatakan bahwa, tidak terjadi simbiosis ini disebabkan oleh faktor ukuran tanaman dan eksudat akar. Ukuran tanaman dapat mempengaruhi terjadinya simbiosis antara bakteri Rhizobium sp. Dengan akar tanaman kedelai, karena apabila ukuran tanaman tersebut kerdil maka tanaman tersebut mengalami defisiensi unsur hara makro maupun mikro. Maharani (2008) menyatakan bahwa kelebihan atau kekurangan unsur hara akan berdampak buruk terhadap pertumbuhan Rhizobium sp. Kekurangan besi (Fe) akan menekan fiksasi nitrogen karena unsur tersebut merupakan penyusun nitrogenase. Kekurangan unsur hara fosfor (P) dan kalsium (K) juga akan menghambat pembentukan bintil akar (nodul). Berdasarkan hasil praktikum dibanding literatur tanah yang digunakan sebagai media tidak mengalami defisiensi unsur hara, karena pembetukan nodul akar pada tanaman kedelai yang diberi inokulasi dapat tumbuh banyak dan besar.

Kesimpulan

Berdasarkan praktikum yang dilakukan disimpulkan bahwa pertumbuhan pada tanaman adalah pertambahan jumlah, volume dan masa sel tanaman yang bersifat irrevesible. Pertumbuhan pada pemeliharaan tertinggi pada tumbuhan yang diberi inokulasi sedangkan pada jumlah daun paling banyak pada tanaman yang diberi inokulasi, Pertumbuhan dipengaruhi oleh faktor internal bisa genetik dan faktor eksternal yang meliputi nutrien yang diperoleh, air dan mineral, cahaya, dan kelembaban.

Daftar Pustaka

Adisarwanto, R. 2005. Meningkatkan Hasil Panen Kedelai di Lahan Sawah Kering Pasang Surut. Penerbit Swadaya.

Andrianto, I. 2004. Teknologi Budidaya Intensif Tanaman Kedelai di Lahan Sawah. Jurnal Proyek Penelitian dan Pengembangan Pertanian Rawa Terpadu 17(1): 1−8.

Bertham, Y.H. 2002. Respon Tanaman Kedelai (Glycine max (L.) merill) Terhadap Pemupukan Fosfor dan Kompos Jerami Pada Tanah Ultisol”. Jurnal Ilmu-ilmu Pertanian Indonesia Vol.4 No.2 Hal: 78-83.

Campbel, N.A., Jane, B.R., Lawrence, G.M. 2003. Biologi Edisi Kelima Jilid 2. Erlangga. Jakarta.

Danarti dan Najati, 1995. Palawija, Budidaya dan Analisis Usaha Tani. Penebar Swadaya Jakarta.

Hanum, Chaerani. 2010. Pertumbuhan dan Hasil Kedelai yang Diasosiasikan dengan Rhizobium pada Zona Iklim Kereing E (Klasifikasi Oldeman). Departement Agronomy, Faculty of Agriculture, North Sumatera University.

Irwan, W. A. 2006. Budidaya Tanaman Kedelai (Glycine max (L.) Merill). Universitas Padjajaran. Jatinangor.

Irwanto. 2001. Pengaruh Hormon IBA (Indole Butyric Acid) Terhadap Persen Jadi Stek Pucuk Meranti Putih (Shorea montigena). Skripsi. Jurusan Kehutanan. Fakultas Pertanian Universitas Pattimura. Ambon.

Kimball, J.W. 1996. “Biologi edisi ke-5 jilid ke-2”. Erlangga . Jakarta.

Lakitan, B. 2004. Dasar-Dasar Fisiologi Tumbuhan. PT Raja Grafindo Persada. Jakarta.

Maharani, P.S. 2008. Nodulasi dan Efektivitas Rhizobium sp. Endogen Tanah Entisol dan Vertisol pada Tanaman Kedelai (Glycine max (L.) Merril). (Skripsi) Jurusan Biologi Fakultas Sains dan Teknologi. Universitas Islam Negeri Malang. Malang.

Pranasari, Rizka A. 2012. Jurnal Sains dan Seni. Fakultas MIPA ITS. Solo

Purbakti, Y.P., Yaya, H., Lisa, M. 2014. Respon pertumbuhan dan produksi kedelai (Glycine max L.(Merill)) di lahan kering terhadap inokulasi Brady Rhizobium japonicum yang diinduksi genistein dan pemberian pupuk organik. Fakultas Pertanian USU. Medan.

Rukmana., Rahmat,Y., Yuniarsih. 2008. Kedelai Budidaya dan Pasca Panen. Kanisius. Yogyakarta

Soetrisno, Djoko., Bambang Suhartanto, Nafiatul Umami. Nilo Suseno. 2008. Ilmu Hijauan Makanan Ternak. Fakultas Peternakan. Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta.

Suharjo, U.K.J. 2001. Efektifitas Nodulasi Rhizobium japonicum pada Kedelai yang Tumbuh di Tanah Sisa Inokulasi dan Tanah dengan Inokulasi Tambahan. Jurnal Ilmu-Ilmu Pertanian Indoenesia. Jakarta. Vol 3(1)

Suharno B., Fibria Kaswinarni, Filia Prima Artharina. 2009. Respon Rumput Brachiaria decumbens Terhadap Pertanaman Tumpangsari Rumput-Kedelai (Glycine max) Dengan Inokulasi Rhizobium sp. Diukur Berdasarkan Produksi Bahan Kering, Serapan Fosfor, Serapan Kalsium, Kecernaan dan Kualitas Hijauan. Fakultas Pendidikan MIPA IKIP PGRI Semarang. Semarang.

Sumarno. 1997. Kedelai dan Cara Budidaya. Yasaguna. Bogor.

Sutopo. 1993. Pengenalan Hijauan Makanan Ternak. Balai Informasi Pertanian. Jawa Timur. Surabaya.

Trustinah. 1998. Biologi Kacang Tunggak. BALITKABI. Jakarta.

Utri, P., Lollie, A.P., Putri., Luthfi, A., Siregar, M. 2013. Respon Media Tanam dan Pemberian Auksin Asam Asetat Naftalen pada Pembibitan Aren. Program Studi Agroekoteknologi Fakultas Pertanian USU. Medan

LAMPIRAN

Gambar 1. Tanaman kedelai (Glycine max) yang diberi inokulum Rhizobium

Gambar 2. Nodul akar tanaman kedelai (Glycine max) yang diberi inokulum Rhizobium

LAMPIRAN

TINJAUAN PUSTAKA

Kultur Jaringan

Pengertian Kultur Jaringan

Kultur jaringan merupakan perbanyakan tanaman dapat digolongkan menjadi dua, yaitu perbanyakan tanaman secara generatif dan perbanyakan secara vegetatif. Perbanyakan secara generatif adalah dengan menanam biji, sedangkan perbanyakan tanaman secara vegetatif dapat dilakukan dengan okulasi, cangkok, penyambungan, merunduk dan yang paling mutakhir adalah dengan kultur jaringan (Hendaryono dan Wijayani, 1994). Kultur jaringan merupakan salah satu metode perbanyakan tanaman secara vegetatif. Kultur jaringan tertua dilakukan pada biji anggrek dengan tujuan untuk mengecambahkannya dalam media yang kaya nutrisi karena biji dari anggrek tidak mempunyai cadangan makanan. Kultur jaringan terus berkembang dari mengkulturkan biji berkembang dengan mengkulturkan jaringan dan terus berkembang hingga mampu mengkulturkan satu sel dari tanaman (Prawiro, 1992).

Kalus adalah suatu massa sel yang terbentuk pada permukaan eksplan atau pada irisan eksplan. Kalus ini akan tumbuh pada eksplan di media padat, sedangkan di media cair akan tumbuh plb (protokormus) (Hendaryono dan Wijayani, 1994). Tahapan penting dalam proses kultur jarigan ialah kalus. Kalus merupakan sel yang memiliki massa yang aktif membelah dan tak terorgaisir yang biasanya muncul sebagai respon terhadap pelukaan jaringan dan organ yang telah mengalami deferensiasi (Prawiro, 1992). Genta (1997), menjelaskan dalam kultur jaringan semua tipe organ (akar, batang, daun, bunga,dll) dan jaringan dapat digunakan sebagai bahan eksplan untuk induksi kalus. Aktivitas proses pembelahan sel dan pembentukan organ dan embrio diperlukan hormon endogen kualitas hormon tersebut ditentukan tipe bahan awal misal umur tanaman dan posisi eksplan pada tanaman.

Teknik kultur jaringan dimulai dengan pengambilan eksplan, yaitu bagian kecil jaringan atau organ yang dipisahkan dari tanaman induk kemudian dikultur. Eksplan dari jaringan yang masih muda, diperkirakan masih dapat menghasilkan zat tumbuh sendiri dan sel-selnya masih aktif membelah, sehingga proses kultur jaringan dapat diharapkan berhasil sampai menjadi tanaman yang lebih lengkap. Jaringan yang masih muda serta belum banyak terdeferensiasi terdapat pada jaringan meristem. Dari semua jenis tanaman, bagian inilah yang paling banyak berhasil dikultur secara in vitro. Sel serta jaringan yang masih muda atau yang dinamakan juvenile akan tetap mudah dalam pengkulturan sehingga daya untuk regenerasi tetap ada, sedangkan sel-sel yang sudah tua kesanggupan untuk regenerasi sudah berkurang (Hendaryono dan Wijayani, 1994).

Perkecambahan In Vitro

Perbanyakan tanaman dengan kultur in vitro dalam waktu singkat dari bahan yang sangat terbatas dapat dihasilkan bibit dalam jumlah yang banyak. Keberhasilan tersebut mendorong dimanfaatkannya kultur in vitro sebagai teknologi perbanyakan yang banyak memberikan keunggulan daripada cara konvensional (Mariska dan Purnamaningsih, 2001 dalam Zakaria, 2010). Kultur in vitro merupakan suatu teknik mengisolasi bagian hidup tanaman (eksplan), kemudian menumbuhkannya secara aseptik pada media yang telah ditentukan komposisi nutriennya (Suryowinoto, 2000 dalam Zakaria, 2010). Teknik kultir in vitro selain digunakan untuk perbanyakan tanaman juga digunakan untuk memproduksi senyawa metabolit sekunder yang menjadi sumber bahan obat (Aprianita, 2003 dalam Zakaria, 2010).

Dalam budidaya in vitro (kultur jaringan), menginduksi kalus merupakan salah satu langkah penting, setelah itu diusahakan agar terjadi diferensiasi akar dan tunas. Proses terjadinya kalus sampai diferensiasi berbeda–beda, tergantung pada bagian tanaman yang dipakai sebagai eksplan, metode budidaya in vitro, juga zat–zat tanaman yang dibubuhkan pada media dasar. Untuk mendapatkan kalus penggunaan eksplan dari daun umumnya lebih menguntungkan dari pada eksplan batang. Masalah yang perlu diantipasi adalah generasi kalus menjadi planlet. Untuk mendapatkan kalus, zat pengatur tumbuh yang biasa digunakan adalah 2,4–D dari golongan auksin dan BAP dari golongan sitokinin (Ibrahim et al., 2004).

Medium Kultur Jaringan

Media kultur jaringan tersusun dari berbagai garam mineral asam amino, gula, vitamin, dan hormon tumbuhan. Mula-mula campuran media dibuat cair yaitu dengan menambahkan air suling (aquadest). Selanjutnya setelah jaringan berada dalam media cair dan digoncang-goncang dengan alat yang disebut shaker (meja penggojok) tunas-tunas akan muncul berupa tonjolan-tonjolan yang disebut procorn likabodies (Prawiro, 1992). Media merupakan faktor penetu dalam perbanyakan dengan kultur jaringan. Komposisi media yang digunakan tergantung dengan jenis tanaman yang akan diperbanyak. Media yang digunakan biasanya terdiri dari garam mineral, vitamin, dan hormon, dan juga bahan tambahan lain seperti agar dan gula. Zat pengatur tumbuh (hormon) yang ditambahkan juga bervariasi, baik jenisnya maupun jumlahnya, tergantung dengan tujuan dari kultur in vitro yang dilakukan. Media yang sudah dibuat ditempatkan pada tabung reaksi atau botol-botol kaca. Media yang digunakan harus disterilkan terlebih dahulu dengan autoklaf (Yusnita, 2003 dalam Zakaria, 2010).

Pudyastuti et al., (2011) menyatakan bahwa hasil penelitian tentang pertumbuhan kalus pada kedelai menunjukan bahwa untuk tahap induksi maupun proliferasi kalus embriogenik, media dengan penambahan 10 mg/liter 2,4D dan 10 mg/liter NAA memberikan respon yang lebih baik dibandingkan dengan penambahan 40 mg/liter 2,4 D dan 20 mg/liter. Media yang digunakan mempunyai pengaruh yang berbeda terhadap kemampuan regenerasi eksplan. Hamidah et al., (1997) dalam Marlina (2004) memodifikasi media MS dengan mereduksi hara makro menjadi ½ konsentrasi, konsentrasi sukrosa 6% dan modifikasi vitamin, untuk mendapat respons regenrasi yang tinggi pada eksplan. Penambahan air kelapa dan peningkatan konsentrasi 2,4 D dari 0,1 mg/l menjadi 2,5 mg/l mampu menstimulasi regenerasi eksplan secara optimal pada beberapa kultivar.

Media MS mengandung 40 mM N dalam bentuk NO₃ dan 29 mM N dalam bentuk NH₄⁺. Kandungan N ini, lima kali lebih tinggi dari N total yang terdapat pada media Miller, 15 kali lebih tinggi dari media tembakau Hildebrant, dan 19 kali lebih tinggi dari media White. Kalium juga ditingkatkan sampai 20 mM, sedangkan P, 1.25 mM. Unsur makro lainnya konsemtrasinya dinaikkan sedikit. Pada tahun-tahun sesudah penemuan media MS, dikembangkan media-media lain berdasarkan media MS tersebut, antara lain media Lin & Staba, menggunakan media dengan setengah dari komposisi unsur makro MS, dan memodifikasi 9 mM ammonium nitrat yang seharusnya 10mM, sedangkan KH2 PO4 yang dikurangi menjadi 0.5 Mm, tidak 0.625 mM (Gunawan, 1992). Thengane et al., (2003) menyatakan bahwa Murashige dan Skoog terdiri dari berbagai komposisi dan konsentrasi berupa auksin 2,4-D (0,9 sampai 22,62 µM), IAA (1,14 sampai 28,54 µM), NAA (1,07 sampai 26,85 µM) atau 2,4,5-T (0,78 sampai 19,57 µM) dan sitokinin kinetin (2,32 µM) atau BA (2,22 sampai 6,66 µM) dengan 2% sukrosa medium jel berasal dari 0,75% agar-agar. pH dari medium 5,7 sampai 5,8 yang sebelumnya sudah dilakukan sterilisasi dengan autoklaf pada 15 psi dengan suhu 121⁰C selama 20 menit.

Zat Pengatur Tumbuh

Zat pengatur tumbuh terdiri dari golongan sitokinin dan auksin. Auksin mempunyai peran ganda tergantung pada struktur kimia, konsentrasi, dan jaringan tanaman yang diberi perlakuan. Auksin digunakan untuk menginduksi pembentukan kalus, kultur suspensi, dan akar, yaitu dengan memacu pemanjangan dan pembelahan sel di dalam jaringan kambium. Auksin memacu pembentukan kalus embriogenik dan struktur embrio somatik seringkali diperlukan dalam konsentrasi yang relatif tinggi (Gaba, 2005). Kultur in vitro banyak mengunakan hormon pertumbuhan baik berupa auksin, sitokinin, maupun hormon pertumbuhan lainnya. Kombinasi auksin dan sitokinin diketahui dapat mempercepat pertumbuhan dan perkembangan eksplan pada kultur in vitro. Auksin berperan pada pembentangan sel, sedangkan sitokinin merangsang pembelahan sel. Interaksi kedua ZPT tersebut akan meningkatkan jumlah jumlah dan ukuran sel dalam jaringan (Wareing dan Philips, 1981 dalam Zakaria, 2010). Auksin pada konsentrasi rendah dapat memacu pertumbuhan akar dan pada konsentrasi tinggi dapat merangsang pertumbuhan kalus (Magoon dan Singh, 1995), sementara sitokinin konsentrasi rendah dapat memacu perkembangan tunas sedangkan konsentrasi tinggi merangsang penggandaan tunas (Nurwahyuni, 2004).

Kultur in vitro banyak menggunakan hormon pertumbuhan baik berupa auksin, sitokinin, maupun hormon pertumbuhan lainnya. Kombinasi auksin dan sitokinin diketahui dapat mempercepat pertumbuhan dan perkembangan eksplan pada kultur in vitro. Auksin berperan pada pembentangan sel, sedangkan sitokinin merangsang pembelahan sel. Interaksi kedua ZPT tersebut akan meningkatkan jumlah dan ukuran sel dalam jaringan (Wareing dan Phillips (1981) dalam Zakaria (2010).

Zat pengatur tumbuh (ZPT) dalam kultur jaringan diperlukan untuk mengendalikan dan mengatur pertumbuhan kultur tanaman. Zat ini mempengaruhi pertumbuhan dan morfogenesis dalam kultur sel, jaringan, dan organ. Jenis dan konsentrasi ZPT tergantung pada tujuan dan tahap pengkulturan. Secara umum, zat pengatur tumbuh yang digunakan dalam kultur jaringan ada tiga kelompok besar, yaitu auksin, sitokinin, dan giberelin (Gunawan, 1992). Auksin digunakan secara luas dalam kultur jaringan untuk merangsang pertumbuhan kalus, akar, suspensi sel dan organ. Contoh hormon kelompok auksin adalah 2,4 Dikloro Fenoksiasetat (2,4-D), Indol Acetid Acid (IAA), Naftalen Acetid Acid (NAA), atau Indol Buterik Asetat (IBA). Golongan sitokinin berperan untuk menstimulus pembelahan sel dan merangsang pertumbuhan tunas pucuk, golongan ini sangat penting dalam pengaturan pembelahan sel dan morfogenesis. Sitokinin yang biasa digunakan dalam kultur jaringan adalah kinetin, ziatin, benzilaminopurine (BAP). Giberelin untuk diferensiasi atau perbanyakan fungsi sel, terutama pembentukan kalus. Hormon kelompok giberelin adalah GA3, GA2, dan GA1 (Gunawan, 1992).

Tahapan Kerja dalam Kultur Jaringan

Tahapan dalam pembuatan kultur jaringan ada 4, yaitu persiapan, inokulasi, pemeliharaan, dan aklimatisasi. Persiapan yang dilakukan meliputi sterilisasi alat, pembuatan medium, sterilisasi medium, perkecambahan tanaman dalam media kultur. Sterilisasi dilakukan dengan menggunakan autoklaf. Prinsip utama dari teknik kultur jaringan adalah perbanyakan tanaman dengan menggunakan bagian vegetatif tanaman menggunakan media buatan yang dilakukan di tempat steril (Jumin, 1992).

Tahapan yang dilakukan dalam perbanyakan tanaman dengan teknik kultur jaringan adalah pertama pembuatan media. Kedua, inisiasi adalah pengambilan eksplan dari bagian tanaman yang akan dikulturkan. Bagian tanaman yang sering digunakan untuk kegiatan kultur jaringan adalah tunas. Ketiga, sterilisasi adalah bahwa segala kegiatan dalam kultur jaringan harus dilakukan di tempat yang steril, yaitu di laminar flow dan menggunakan alat-alat yang juga steril. Sterilisasi juga dilakukan terhadap peralatan, yaitu menggunakan etanol yang disemprotkan secara merata pada peralatan yang digunakan. Teknisi yang melakukan kultur jaringan juga harus steril. Keempat, multiplikasi adalah kegiatan memperbanyak calon tanaman dengan menanam eksplan pada media. Kegiatan ini dilakukan di laminar flow untuk menghindari adanya kontaminasi yang menyebabkan gagalnya pertumbuhan eksplan. Tabung reaksi yang telah ditanami eksplan diletakkan pada rak-rak dan ditempatkan di tempat yang steril dengan suhu kamar. Kelima, pengakaran adalah fase dimana eksplan akan menunjukkan adanya pertumbuhan akar yang menandai bahwa proses kultur jaringan yang dilakukan mulai berjalan dengan baik. Keenam, pengamatan dilakukan setiap hari untuk melihat pertumbuhan dan perkembangan akar serta untuk melihat adanya kontaminasi oleh bakteri ataupun jamur. Ketujuh, aklimatisasi adalah kegiatan memindahkan eksplan keluar dari ruangan aseptic ke bedeng. Pemindahan dilakukan secara hati-hati dan bertahap, yaitu dengan memberikan sungkup (Nugroho, 1996).

Manfaat Kultur Jaringan

Metode kultur in vitro dikembangkan untuk membantu memperbanyak tanaman, khususnya untuk tanaman yang sulit dikembangbiakkan secara generatif. Bibit yang dihasilkan dari kultur jaringan mempunyai beberapa keunggulan, antara lain mempunyai sifat yang identik dengan induknya, dapat diperbanyak dalam jumlah yang besar sehingga tidak terlalu membutuhkan tempat yang luas, mampu menghasilkan bibit dengan jumlah besar dalam waktu yang singkat, kesehatan dan mutu bibit lebih terjamin, kecepatan tumbuh bibit lebih cepat dibandingkan dengan perbanyakan konvensional (Harianto, 2009). Manfaat kultur jaringan bagi ternak sangat besar. Karena untuk menghasilkan ternak dengan produksi dan performan yang baik, dibutuhkan pakan dengan kualitas yang baik pula. Untuk menjaga kualitas tanaman pakan tetap baik, tidak cukup hanya mengandalkan metode pengembangan tanaman akan dengan metode yang biasa. Kultur jaringan muncul sebagai masalah dari tanaman pakan. Kultur jaringan mampu memproduksi tanaman pakan dalam jumlah yang banyak dan dengan kualitas yang sama baiknya. Sehingga kultur jaringan sangat menunjang kualitas dan jumlah tanaman pakan yang dihasilkan untuk menghasilkan ternak dengan produkksi dan performan yang baik (Marlina, 2004 ).

MATERI DAN METODE

Materi

Alat. Alat-alat yang digunakan dalam praktikum ini atara lain adalah botol kultur, petridish steril dengan kertas saring, pinset, skalpel, Laminar Air Flow, autoklaf, tabung reaksi, cawan petri, kertas saring, dan pipet steril.

Bahan. Bahan-bahan yan digunakan dalam praktikum ini antara lain adalah meristem apikal dari akar, daun, dan batang tanaman kacang hijau (Vigna radiata), Medium murashige dan skoog (MS) dengan zat pengatur tumbuh auksin 2,4-D 2 mg/L dan sitokinin (kinetin), spirtus, alkohol 60%, bayclin, dan aquades steril.

Metode

Induksi kalus. Biji kacang hijau (Vigna radiata) digerminasikan menggunakan botol kultur dan diinkubasikan selama 7 hari. Jaringan meristem dari tunas tanaman kacang hijau (Vigna radiata) diambil dalam lingkungan yang steril. Potong bagian meristem apikal (akar dan daun) menggunakan pisau skapel dengan ukuran 2 mm sampai 3 mm. Inokulasi dalam botol yang berisi medium MS dengan perbandingan hormon auksin dan sitokinin adalah 5:1. Inkubasikan pada ruang kultur bersuhu 24⁰C dan tanpa pencahayaan. Amati pembentukan tunas dan kalusnya setiap hari dan dicatat pertumbuhannya pada hari ke-3, ke-6, ke-9, ke-12, ke-15, ke-18, dan ke-21.

Induksi tunas. Kalus dari eksplan (Vigna radiata) yang telah tumbuh dipotong dan ditanam pada botol yang berisi media MS dengan tambahan zat pengatur tumbuh untuk pertumbuhan tunas yaitu hormon auksin dan sitokinin dengan perbandingan 1:5. Inkubasi pada ruang kultur bersuhu 24⁰C dengan cahaya. Amati pembentukan tunas dan kalusnya setiap hari dan catat pertumbuhannya pada hari ke-3, ke-6, ke-9, ke-12, ke-15, ke-18, dan ke-21.

HASIL DAN PEMBAHASAN

Tujuan dari praktikum kultur jaringan adalah untuk mengetahui teknik perkembangbiakan tanaman secara kultur jaringan. Berdasarkan hasil praktikum yang telah dilakukan, diketahui bahwa tahapan pembuatan kultur jaringan meliputi tahap persiapan, inokulasi, pemeliharaan dan aklimatisasi. Tahapan persiapan, praktikan melakukan beberapa persiapan mulai dari menyiapkan alat-alat yang akan digunakan dalam pembuatan kultur jaringan, persiapan atau membuat medium yang akan digunakan untuk kultur jaringan, serta menyiapkan eksplan atau sumber bibit yang akan digunakan dalam pembuatan kultur jaringan. Tahapan inokulasi, praktikan melakukan sterilisasi, mulai dari sterilisasi alat, medium hingga eksplan. Sterilisasi dilakukan dengan menggunakan autoklaf, selain itu juga dilakukan pengambilan eksplan dan kemudian dilakukan penanaman terhadap eksplan yang digunakan. Tahapan pemeliharan, praktikan mengamati pertumbuhan eksplan selama 21 hari yang ditempatkan dalam ruangan dengan suhu 24⁰C, selama pengamatan dilakukan 2 perlakuan yang berbeda yaitu perlakuan gelap dan terang dengan perbandingan hormon yang diberikan adalah pada tempat terang sitokinin 5 dan auksin 1, sedangkan pada tempat gelap sitokinin 1 dan auksin 5. Tahapan aklimatisasi meliputi penyesuaian/adaptasi plantlet dari kondisi heterotrof di dalam botol kultur menjadi autotrof pada kondisi alamiahnya.

Soetrisno et al., (2008) menjelaskan kultur jaringan merupakan suatu proses dimana sebagian kecil jaringan hidup (eksplan) diisolasi dari suatu organisme dan ditumbuhkan secara aseptis selama periode tertentu pada medium nutrien. Ukuran eksplan bervariasi, berkisar dari sebesar seedling dan organ (seperti pada kultur embrio dan ovulum) sampai sekecil sel tunggal dan protoplas. Teknik perbanyakan tanaman dengan cara teknik kultur in vitro disebut juga mikropropogasi karena potongan tanaman atau eksplan tersebut berukuran kecil, sedangkan Yusnita (2003) menjelaskan kultur jaringan tanaman merupakan teknik menumbuh-kembangkan bagian tanaman, baik berupa sel, jaringan maupun organ dalam kondisi aseptik secara in vitro. Teknik ini mampu memperbanyak tanaman dalam jumlah besar dan dalam waktu relatif singkat. Tahapan akhir dari perbanyakan tanaman dengan teknik kultur jaringan adalah aklimatisasi planlet. Aklimatisasi dilakukan dengan memindahkan planlet ke media aklimatisasi dengan intensitas cahaya rendah dan kelembapan nisbi tinggi, kemudian secara berangsur-angsur kelembapannya diturunkan dan intensitas cahayanya dinaikkan. Tahap ini merupakan tahap yang kritis karena kondisi iklim di rumah kaca atau rumah plastik dan di lapangan sangat berbeda dengan kondisi di dalam botol kultur.

Medium yang digunakan dalam kultur jaringan adalah jenis medium Murashige dan Skoog karena selain sudah umum digunakan dalam medium untuk kultur jaringan juga karena dalam medium tersebut terbapat banyak nutrien yang memungkinkan terjadinya pertumbuhan lebih maksimal. Marlina (2004) menjelaskan media Murashige dan Skoog (MS) sering digunakan karena cukup memenuhi unsur hara makro, mikro, dan vitamin untuk pertumbuhan tanaman.

Bagian tanaman yang digunakan ketika melakukan kultur jaringan adalah bagian akar dan bagian daun pada tanaman yang masih muda karena tanaman yang masih muda masih sedang dalam proses perbanyakan sel dan juga masih aktif membelah, sehingga proses tumbuhnya kalus lebih memungkinkan terjadi dibandingkan dengan tanaman yang sudah tua karena pertumbuhannya hanya pada pembesaran sel.

pH yang terdapat pada medium berkisar antara 5,4 sampai 5,8, pengaruh terhadap perubahan pH berkaitan dengan pertumbuhan eksplan yang ditanam dan juga terhadap medium yang digunakan. Gunawan (1992) menjelaskan pH media biasanya diatur pada kisaran 5.6 sampai 5.8, tetapi tanaman yang berbeda mungkin memerlukan pH yang berbeda untuk pertumbuhan optimum. Jika pH lebih tinggi dari 6.0, media mungkin menjadi terlalu keras dan jika pH kurang dari 5.2, agar tidak dapat memadat. Sterilisasi dengan menggunakan autoklaf dilakukan pada suhu 120⁰C dengan tekanan 15psi selama 20 menit tidak menyebabkan nutriennya mati dikarenakan perebusan dilakukan secara cepat. Gunawan (1992) menyatakan untuk menginduksi kalus dari tumbuhan monokotil yaitu sebagian rumput-rumputan dan sereal konsentrasi 2,4 D yang sering digunakan adalah 9,0 sd 45,2 μM ( 2,0 sd 10,0 mg/liter) dan 2,4 D sifatnya tahan terhadap panas pada saat autoklaf jadi tidak masalah pemberian hormonnya sebelum media diautoklaf.

Kontaminasi pada Medium dan Eksplan

Kontaminan merupakan salah satu kendala yang umum dihadapi para peneliti. Tingkat kontaminasi pada penelitian mikologi dapat mencapai 100%. Untuk itu perlu dilakukan usaha-usaha pengendalian. Pengendalian mikroorganisme ditujukan untuk mencegah penyebaran penyakit, membasmi mikroorganisme pada inang, serta mencegah pembusukan dan kerusakan bahan (Susilowati dan Shanti, 2001). Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan, diperoleh data kontaminasi pada medium dan eksplan tertera pada tabel 6.1 sebagai berikut.

Tabel 6.1. Kontaminasi pada medium dan eksplan

Perlakuan	Kelompok	Hari, Tanggal
Induksi kalus	17	–
Induksi kalus	18	–
Induksi tunas	17	–
Induksi tunas	18	–

Berdasarkan tabel tersebut, dapat diketahui bahwa tidak terdapat kontaminsi untuk kedua percobaan, baik untuk induksii kalus maupun induksi tunas. Penyebab medium kultur jaringan terkontaminasi jamur yaitu sterilisasi alat kurang sempurna, suhu dan kelembaban setiap medium berbeda-beda, bahan yang dibuat untuk medium kurang homogen. Susilowati dan Shanti (2001) menyatakan bahwa mikroorganisme kontaminan berasal dari enam genus, yakni cendawan Mucor, Rhizopus, Aspergillus, Cladosporium, Dictyostelium dan golongan Saccharomyces. Smith (2000) berpendapat bahwa eksplan atau kultur dapat terkontaminasi oleh berbagai mikrooganisme seperti jamur, bakteri, serangga atau virus. Organisme-organisme tersebut secara universal terdapat pada jaringan tanaman. Banyak yang bersifat non-patogenik, artinya mereka tidak menyebabkan bahaya bagi tanaman inang pada kondisi normal. Kondisi kering dan adanya organisme competitor menyebabkan mereka dalam kondisi terkontrol. Tapi, kondisi in vitro yang disukai eksplan, yaitu mengandung sukrosa dan hara dalam konsentrasi tinggi, kelembaban tinggi dan suhu yang hangat, juga disukai mikroorganisme yang seringkali tumbuh dan berkembang sangat cepat, mengalahkan eksplan.

` Zulkarnaen (2009) menyatakan bahwa ada beberapa faktor yang yang mempengaruhi keberhasilan kultur jaringan diantaranya faktor lingkungan yang meliputi suhu dimana tanaman umumnya tumbuh pada lingkungan dengan suhu yang tidak sama setiap saat, misalnya pada siang dan malam hari tanaman mengalami kondisi dengan perbedaan suhu yang cukup besar. Tanaman pada suhu ruang kultur dibawah optimum, pertumbuhan eksplan lebih lambat, namun pada suhu diatas optimum pertumbuhan tanaman juga terhambat akibat tingginya laju respirasi eksplan. Faktor pH yang berubah, faktor kelembaban dimana kelembaban relatif dalam botol kultur dengan mulut botol yang ditutup umumnya cukup tinggi, yaitu berkisar antara 80 sampai 99%. Jika mulut botol ditutup agak longgar maka kelembaban relatif dalam botol kultur dapat lebih rendah dari 80%. Sedangkan kelembaban relatif di ruang kultur umumnya adalah sekitar 70%. Jika kelembaban relatif ruang kultur berada dibawah 70% maka akan mengakibatkan media dalam botol kultur (yang tidak tertutup rapat) akan cepat menguap dan kering sehingga eksplan dan plantlet yang dikulturkan akan cepat kehabisan media.

Induksi kalus

Kalus adalah massa sel yang aktif membelah dan tak terorganisir yang biasanya muncul sebagai respon terhadap pelukaan jaringan dan organ yang telah mengalami diferensiasi. Hendaryono dan Wijayani (1994), menyatakan bahwa kalus adalah suatu massa sel yang terbentuk pada permukaan eksplan atau pada irisan eksplan. Kalus ini akan tumbuh pada eksplan di media padat, sedangkan di media cair akan tumbuh plb (protokormus). Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan, diperoleh data produksi kalus tertera pada tabel 2 sebagai berikut.

Tabel 6.2. Produksi kalus

Hari ke-	Eksplan
Hari ke-	Daun	Akar
3	–	–
6	–	–
9	–	+
12	–	+
15	–	+
18	–	+
21	–	+

Keterangan : (-) tidak ada pertumbuhan kalus

(+) pertumbuhan kalus sedikit

(++) pertumbuhan kalus banyak

(+++) pertumbuhan kalus sangat banyak

Berdasarkan tabel 6.2, setelah dilakukan pemeliharaan selama 21 hari, diketahui bahwa untuk kalus dengan eksplan daun tidak menunjukkan adanya pertumbuhan kalus, sedangkan untuk kalus dengan eksplan akar mulai menunjukkan adanya pertumbuhan pada hari ke 9 dan hingga hari terakhir pertumbuhan kalus mengalami pertumbuhan sedikit. Tidak tumbuhnya kalus pada eksplan daun disebabkan karena kandungan nutrien yang ada pada media kurang terpenuhi, selain itu ada kemungkinan faktor bagian tumbuhan yang digunakan untuk eksplan. Faktor internal yang mempengaruhi keberhasilan kutur jaringan adalah jenis tanaman (genetik), kondisi fisiologis, tanaman induk, jenis eksplan (Mariska dan Suci, 2009). Penelitian yang pernah dilakukan oleh Riyadi dan Tirtoboma (2004) terhadap embrio somatik kopi arabika, diperoleh hasil induksi terbaik untuk varietas Kartika-1 secara langsung dari kultur daun muda diperoleh pada media MS standar yang diberi 4 mg/l 2,4-D dan dikombinasikan dengan 0,1 mg/l kinetin yang dapat menginduksi seluruh eksplan dalam waktu empat minggu setelah kultur. Penggandaan embrio somatik kopi arabika terbaik diperoleh pada perlakuan 2 mg/l 2,4-D yang dikombinasikan dengan 0,1 mg/l kinetin yang dapat menghasilkan embrio somatik terbanyak dalam waktu enam minggu setelah subkultur. Penelitian Miryam et al., (2008) menghasilkan bahwa penambahan hormon BAP (sitokinin) sebesar 0 dengan hormon NAA (auksin) sebesar 2 menghasilkan persentase eksplan yang hidup sebesar 100%.

Pertumbuhan kalus baik untuk eksplan daun maupun akar dilakukan pada ruangan gelap atau tanpa pencahayaan. Hormon yang digunakan untuk pertumbuhan kalus pada ruangan gelap adalah hormon sitokinin dan auksin dengan perbandingan 5:1. Hal ini disebabkan karena pada ruangan gelap hormon auksin lebih efektif karena untuk merangsang pertumbuhan sel. Dwidjoseputro (1985) dalam Putri (2008) menyatakan sinar atau cahaya dapat merusak auksin dan dapat pula menyebabkan pemindahan auksin ke jurusan yang menjauhi sinar. Metode kultur jaringan dalam kondisi gelap merupakan salah satu cara untuk mengefektifkan kerja auksin sehingga dapat mempercepat pembentukan kalus. Magoon dan Singh (1995) juga menyatakan bahwa auksin pada konsentrasi rendah dapat memacu pertumbuhan akar dan pada konsentrasi tinggi dapat merangsang pertumbuhan kalus. Penelitian yang pernah dilakukan oleh Zakaria (2010) menunjukkan bahwa jika konsentrasi auksin lebih besar daripada sitokinin, maka akar akan terbentuk, sedangkan jika konsentrasi sitokinin yang lebih besar makan yang terbentuk adalah tunas. Abidin (1993) dalam Miryam et al., (2008) menambahkan bahwa aplikasi dari auksin dan sitokinin dalam berbagai perbandingan akan menghasilkan pertumbuhan yang berbeda. Apabila dalam perbandingan konsentrasi sitokinin lebih besar dari auksin, maka hal ini akan mendorong pertumbuhan tunas dan daun. Sebaliknya jika sitokinin lebih rendah dari auksin, maka hal ini akan mendorong pertumbuhan akar, sedangkan apabila perbandingan sitokinin dan auksin berimbang, maka pertumbuhan dari tunas, akar dan daun akan berimbang pula.

Gunawan (1992) menyatakan temperatur di dalam ruang kultur yang baik adalah pada suhu normal yaitu antara 25 sampai 28⁰C. Pengaturan suhu dilakukan dengan menggunakan AC, karena ruang kultur merupakan ruang tertutup yang sedikit sekali mempunyai aliran udara bebas. Beberapa perlakuan khusus kadang-kadang memerlukan suhu rendah (18 sampai 20⁰C), sehingga diperlukan adanya growth chamber yang dapat diatur suhu dan pencahayaannya.

Reksohadiprojo (1995) menyatakan bahwa faktor-faktor yang mempengaruhi dalam pembentukan kalus ialah komposisi medium nutrien dan faktor-faktor fisik seperti suhu dan kelembapan dan medium yang digunakan seperti pada praktikum ini yaitu medium MS (Murashige dan Skoog) atau modifikasinya. Muhit (2007) berpendapat bahwa pembentukan kalus embriogenik (dediferensiasi) dimulai dari sel-sel spesifik pembentuk akar, dilanjutkan inisiasi pembentukan akar pada sel-sel yang dekat dengan jaringan pengangkutan yang menjadi meristimatik akibat proses sebelumnya. Selanjutnya akar membentuk primordia akar di dalam jaringan. Primordia tersebut akan terus tumbuh dan membentuk akar ke luar jaringan tanaman. Soetrisno et al., (2008) menyatakan keberhasilan kultur jaringan in vitro tergantung pada banyak faktor, jika salah satu faktor tidak terpenuhi dapat menyebabkan kegagalan seluruh pekerjaan yang dilakukan atau setidaknya hasil yang diperoleh akan berbeda dengan yang diharapkan. Faktor-faktor tersebut berupa eksplan, media, dan lingkungan fisik kultur. Faktor-faktor yang mempengaruhi keberhasilan kultur jaringan antara lain genotip, umur tanaman, umur jaringan atau organ, keadaan fisiologis tanaman, keadaan kesehatan tanaman, kondisi pertumbuhan tanaman, posisi eksplan pada tanaman, ukuran eksplan, pelukaan, metode inokulasi, nurse effect, ruang kultur, dan cahaya, suhu, kelembaban, ketersediaan air, oksigen pada ruang inkubasi.

Induksi Tunas

Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan, diperoleh data produksi kalus tertera pada tabel 3 sebagai berikut.

Tabel 6.3. Produksi tunas

Hari ke-	Eksplan
Hari ke-	Daun	Akar
3	–	–
6	–	–
9	–	+
12	–	+
15	–	+
18	–	+
21	–	+

Keterangan : (-) tidak ada pertumbuhan tunas

(+) pertumbuhan tunas sedikit

(++) pertumbuhan tunas banyak

(+++) pertumbuhan tunas sangat banyak

Berdasarkan tabel 6.3, setelah dilakukan pemeliharaan selama 21 hari, diketahui bahwa untuk kalus dengan eksplan daun tidak menunjukkan adanya pertumbuhan tunas, sedangkan untuk tunas dengan eksplan akar mulai menunjukkan adanya pertumbuhan pada hari ke 9 dan hingga hari terakhir pertumbuhan tunas mengalami pertumbuhan sedikit. Tidak tumbuhnya tunas pada eksplan daun disebabkan karena kandungan nutrien yang ada pada media kurang terpenuhi, selain itu ada kemungkinan faktor bagian tumbuhan yang digunakan untuk eksplan. Faktor internal yang mempengaruhi keberhasilan kutur jaringan adalah jenis tanaman (genetik), kondisi fisiologis, pohon induk, jenis eksplan (Mariska dan Suci, 2009).

Penelitian yang dilakukan Miryam et al., (2008) menunjukkan hasil bahwa pada pemberian hormon BAP (sitokinin) dengan konsentrasi 5 dan hormon NAA (auksin) dengan konsentrasi 1 menunjukkan hasil bahwa persentase eksplan yang hidup sebesar 77,8%. Pudyastuti et al., (2011) menyatakan umumnya kalus dapat diinisiasi dari hampir semua bagian tanaman tetapi bagian yang berbeda menunjukan respon yang berbeda. Hal ini diduga disebabkan karena suatu sifat yang terjadi pada semua sel dalam jaringan asal, tetapi hanya terjadi pada sel di lapisan perifer. Sel-sel pada lapisan tersebut membelah terus menerus sedangkan di tengah tetap quiescent (tidak membelah). Pada kondisi morfologi dalam keadaan terang kotiledon selama 24 jam akan menghasilkan kalus yang sama dengan kalus dari kondisi gelap, namun pada penyinaran yang terus menerus kalus akan berwarna hijau. Selain intensitas cahaya, lama penyinaran (fotoperiodisme) mempengaruhi pertumbuhan eksplan yang dikulturkan.

Pertumbuhan tunas baik pada daun maupun akar dilakukan pada ruangan terang atau dengan pencahayaan. Hormon yang digunakan untuk pertumbuhan kalus pada ruangan gelap adalah hormon sitokinin dan auksin dengan perbandingan 5 : 1. Hal ini disebabkan karena pada ruangan terang hormon sitokinin lebih efektif karena untuk merangsang perkembangan sel dan juga tujuan pembentukan tunas adalah untuk mendapatkan jumlah tunas yang lebih banyak. Nurwahyuni (2004) menyatakan bahwa sitokinin konsentrasi rendah dapat memacu perkembangan tunas sedangkan konsentrasi tinggi merangsang penggandaan tunas. Berdasarkan penelitian yang pernah dilakukan oleh Putri (2008) menunjukkan hasil bahwa pertumbuhan kultur tanaman in vitro pertumbuhannya lebih cepat ketika adanya cahaya dibandingkan tidak ada cahaya pada perlakuan medium yang sama. Abidin (1993) dalam Miryam et al., (2008) menambahkan bahwa aplikasi dari auksin dan sitokinin dalam berbagai perbandingan akan menghasilkan pertumbuhan yang berbeda. Apabila dalam perbandingan konsentrasi sitokinin lebih besar dari auksin, maka hal ini akan mendorong pertumbuhan tunas dan daun. Sebaliknya jika sitokinin lebih rendah dari auksin, maka hal ini akan mendorong pertumbuhan akar, sedangkan apabila perbandingan sitokinin dan auksin berimbang, maka pertumbuhan dari tunas, akar dan daun akan berimbang pula.

Soetrisno et al., (2008) menyatakan keberhasilan kultur jaringan in vitro tergantung pada banyak faktor, jika salah satu faktor tidak terpenuhi dapat menyebabkan kegagalan seluruh pekerjaan yang dilakukan atau setidaknya hasil yang diperoleh akan berbeda dengan yang diharapkan. Faktor-faktor tersebut berupa eksplan, media, dan lingkungan fisik kultur. Faktor-faktor yang mempengaruhi keberhasilan kultur jaringan antara lain genotip, umur tanaman, umur jaringan atau organ, keadaan fisiologis tanaman, keadaan kesehatan tanaman, kondisi pertumbuhan tanaman, posisi eksplan pada tanaman, ukuran eksplan, pelukaan, metode inokulasi, nurse effect, ruang kultur, dan cahaya, suhu, kelembaban, ketersediaan air, oksigen pada ruang inkubasi.

Suatu jaringan tanaman dapat diregenerasikan secara in vitro melalui dua cara yaitu organogenesis/morfogenesis tunas dan embriogenesis somatik. Embriogenesis somatik merupakan proses dimana sel somatik dalam kondisi terinduksi akan menghasilkan sel-sel embriogenik, yang akan mengalami serangkaian perubahan morfologi dan biokimia dan akhirnya terbentuk embrio somatik (Zimmerman, 1993; Jimenez, 2001 dalam Khumaida dan Tri, 2010). Semua sel somatik di dalam tanaman mengandung seri informasi yang dibutuhkan untuk menghasilkan tanaman utuh dan fungsional, sehingga embriogenesis somatik merupakan bentuk dasar dari sifat totipotensi (total genetic potential) sel, suatu sifat unik dari tanaman tingkat tinggi (Quiroz-Figueroa et al., 2006 dalam Khumaida dan Tri, 2010). Peterson and Smith (1991) dalam Lestari dan Rosa (2008) kalus yang embriogenik adalah yang berwarna putih kuning, mengkilat dan remah (mudah dipisahkan membentuk fragmen), sedangkan kalus yang non embriogenik pada umumnya berwarna kuning kecoklatan, agak pucat dan lembek berair sehingga sulit dipisahkan.

KESIMPULAN

Berdasarkan hasil pembahasan dapat disimpulkan bahwa teknik perkembangbiakan tanaman secara kultur jaringan meliputi eksplan akar, eksplan batang, dan eksplan daun tanamanyang kemudian mengalami diferensiasi untuk membentuk kalus. Hasil pengamatan pertumbuhan kalus maupun pertumbuhan tunas pada eksplan daun tidak ada pertumbuhan sedangkan pada eksplan akar mengalami pertumbuhan.

DAFTAR PUSTAKA

Abidin, Z. 1993. Dasar-dasar Pengetahuan Tentang Zat Pengatur Tumbuh. Angkasa. Bandung.

Gaba, V.P. 2005. Plant Growth Regulator. In R.N. Trigiano A\and D.J. Gray (Eds.) Plant Tissue Culture and Development. Crc Press. London. P. 87-100.

Genta. 1997. Budidaya Tanaman Pangan. Agritec. Surabaya.

Gunawan, L. W. 1992. Teknik Kultur Jaringan Tumbuhan. Institut Pertanian Bogor. Bogor.

Hamidah, M., A. G. A. Karim, dan P. Debergh. 1997. Somatic embryo genesis and plant regeneration in Anthurium scherzeranum. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 49: 23-27.

Harianto. W. 2009. Pengenalan Teknik In Vitro. Bumi Aksara. Jakarta.

Hendaryono, Sriyanti dan Ari Wijayani. 1994. Teknik Kultur Jaringan. Penerbit Kanisius. Yogyakarta.

Ibrahim,M.S.D., N. Nova K., Nurliani B. 2004. Studi pendahuluan : induksi kalus embriogenik dari eksplan daun Echinaceae purpurea. Buletin TRO Vol. XV No. 2, 2004.

Jumin, H. B. 1992. Etiologi Tanaman Suatu Pendekatan Fisiologi. Rajawali Press. Jakarta.

Khumaida, N., dan T. Handayani. 2010. Induksi dan Proliferasi Kalus Embriogenik pada Beberapa Genotipe Kedelai. Fakultas Pertanian IPB. Bogor. J. Agron. Indonesia 38 (I) : 19-24 (2010).

Lestari, E. G., dan R. Yunita. 2008. Induksi kalus dan regenerasi tunas pada varietas Fatmawati. Bul. Agron. (36) (2) 106-110 (2008).

Magoon, R. dan Singh, B.d., 1995. Promotion of adventure bud regeneration by aba in combination with BAP in epicotyl and hypocotyl explants sweet orange (Citrus sinensis L. Osbeck), Scientia horticulturae 63: 123-128.

Mariska, I. Dan D. Sukmadjaja. 2003. Kultur Jaringan Abaka. Balai Penelitian Bioteknologi dan Sumberdaya Genetik Pertanian. Bogor.

Mariska, I., dan S. Rahayu. 2009. Pengadaan Bibit Tanaman Tebu Melalui Kultur Jaringan. Litbang Pertanian.

Marlina, Nina. 2004. Teknik modifikasi media murashige dan skoog (ms) untuk konservasi in vitro mawar (Rossa spp.). Buletin Teknik Pertanian Vol. 9. Nomor 1, 2004.

Marlina, Nina. 2004. Teknik perbanyakan anthurium dengan kultur jaringan. Buletin Teknik Pertanian Vol. 9. Nomor 2, 2004.

Miryam, A., Irfan S., dan Amril D. 2008. Multiplikasi jeruk kacang (Citrus nobilis L.) pada beberapa konsentrasi NAA dan BAP pada media WPM secara in vitro. Fakultas Pertanian Universitas Andalas. Padang. Jerami Vol. I No.2, Mei-Agustus 2008. ISSN 1979-0228.

Muhit, Abdul. 2007. Teknik produksi tahap awal benih vegetatif krisan (Chrysanthemum Morifolium R.). Buletin Teknik Pertanian Vol. 12 No. 1

Nugroho, A Dan Sugito, H. 1996. Pedoman Pelaksanaan Teknik Kultur Jaringan. Penebar Swadaya. Jakarta.

Nurwahyuni,I. 1994. Perbanyakan tanaman kopi arabika (Cofea arabica L) secara kultur jaringan, komunikasi penelitian 11 (2):88-102.

Prawiro. 1992. Peningkatan Produksi Pertanian. Kedaong. Bandung.

Pudyastuti, S., Noor A. H., Sumadi. 2011. Efektivitas ZPT 2,4 D pada medium dan lama pencahayaan untuk menginduksi kalus dari kotiledon kedelai. Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Negeri Semarang. Semarang. ISSN 2085-191X.

Putri, N. I. 2008. Kajian Berbagai Komposisi Media Serta Kondisi Gelap dan Terang Terhadap Induksi Kalus Tanaman Biji Belanda (Guazama ulmifolia Lamk.). Fakultas Pertanian Universitas Sebelas Maret. Surakarta.

Riyadi, I., dan Tirtoboma. 2004. Pengaruh 2,4-D terhadap induksi embrio somatik kopi arabika. Balai Penelitian Bioteknologi Perkebunan Indonesia. Bogor. Buletin Plasma Nutfah Vol.10 No.2 Th.2004.

Reksohadiprodjo, S. 1995. Produksi Hijauan Makanan Ternak Tropik. Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta.

Smith, R.H. 2000. Plant Tissue Culture : Techniques and Experiments. Academic press. London.

Soetrisno, R. D., Bambang Suhartanto, Nafiatul Umami, dan Nilo Suseno. 2008. Bahan Ajar Pengantar Kultur Jaringan Tanaman Pakan. Fakultas Peternakan, Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta.

Susilowati, A., Shanti L. 2001. Keanekaragaman Jenis Mikroorganisme Sumber Kontaminasi Kultur In Vitro di Sub-Lab. Biologi Laboratorium MIPA Pusat UNS. Jurusan Biologi FMIPA UNS. Surakarta.

Thengane, S. R., D. K. Kulkarni., V. A. Shrikhande., S. P. Joshi., K. B. Sonawane., K. V. Krishnamurthy. 2003. Influence of medium composition on callus induction and camptothecin(s) accumulation in Nothapodytes foetida. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 72: 274-251, 2003.

Yusnita. 2003. Kultur Jaringan: Cara Memperbanyak Tanaman Secara Efisien. Agro Media Pustaka. Jakarta.

Zakaria, D. 2010. Pengaruh Konsentrasi Sukrosa dan BAP (Benzil Amino Perine) dalam Media Murashige Skoog (MS) terhadap Pertumbuhan dan Kandungan Reserpin Kalus Pule Pandak (Rauvolfia verticillata Lour.). Fakultas MIPA Universitas Sebelas Maret. Surakarta.

Zulkarnaen. 2009. Kultur Jaringan Tanaman: Solusi Perbanyakan Tanaman Budi Daya. Bumi Aksara. Jakarta.

LAMPIRAN

BAB VI

HERBARIUM

Tinjauan Pustaka

Definisi Herbarium

Herbarium berasal dari kata “hortus dan botanicus”, artinya kebun botani yang dikeringkan. Herbarium adalah koleksi spesimen yang telah dikeringkan, biasanya disusun berdasarkan sistem klasifikasi (Brindson dan Forman, 1998). Tjitosoepomo (2005) mengatakan bahwa herbarium dibagi menjadi 2 yaitu, herbarium basah dan herbarium kering. Herbarium basah yaitu awetan dari suatu hasil eksplorasi yang sudah diidentifikasi dan ditanam bukan lagi di habitat aslinya. Spesiesmen tumbuhan yang telah diawetkan disimpan dalam suatu larutan yang di buat dari komponen macam zat dengan komposisi yang berbeda-beda. Herbarium kering yaitu awetan yang dibuat dengan cara pengeringan, namun tetap terlihat ciri-ciri morfologinya sehingga masih bisa diamati dan dijadikan perbandingan pada saat determinasi selanjutnya. Herbarium yang baik selalu disertai identitas pengumpul (nama pengumpul atau kolektor dan nomor koleksi) serta dilengkapi keterangan lokasi asal material dan keterangan tumbuhan tersebut dari lapangan.

Manfaat Herbarium

Herbarium penting untuk mempelajari taksonomi tumbuhan, mempelajari distribusi geografisnya dan stabilitas nomenclatur (Brindson dan Forman, 1998). Spesies yang dipakai untuk herbarium bisa digunakan sebagai katalog atau mengidentifikasi flora dalam suatu area. Koleksi yang banyak dari suatu area yang kecil digunakan untuk mengetahui atau petunjuk tanaman-tanaman apa saja yang bisa ditanam di situ (Rugayah et al.,2004).Herbarium berguna sebagai penyedia data asli dari suatu tanaman yang telah diidentifikasi atau bisa juga disebut museum tanaman. Herbarium penting untuk mempelajari taksonomi tumbuhan, mempelajari distribusi geografisnya dan stabilitas nomenclatusnya. Peneliti tidak hanya menyimpannya, tetapi juga meneliti tanaman tersebut, yang biasanya digunakan untuk materi referensi dalam menyusun taksonomi (Sutrisna et al., 1998). Herbarium bermanfaat sebagai alat peraga dalam kegiatan pembelajaran, media penelitian, alat bantu identifikasi, untuk pertukaran herbarium antar daerah dan negara, bukti adanya keanekaragaman dan sebagai specimen acuan untuk mempublikasikan specimen baru (Brindson dan Forman, 1998).

Manfaat herbarium menurut Syamsuri (2006), antara lain untuk keperluan dokumentasi ilmiah dianjurkan agar dibuat material herbarium fertil dan untuk setiap nomor koleksi agar dapat dibuat beberapa sepesimen sebagai duplikat (3 spesimen atau lebih per nomor koleksi). Mengidentifikasi tumbuhan yang dibuat herbarium yang lengkap mengandung ranting, daun muda dan tua, kuncup, bunga tua dan muda yang sedang mekar, serta buah muda dan tua. Mempelajari hubunganya dengan tumbuhan lain. Herbarium dapat digunakan untuk menganalisis tumbuhan dan dapat sebagai bahan ajar. Dapat digunakan untuk mengetahui jenis-jenis tumbuhan dan memahami apa saja manfaat tumbuhan yang dibuat herbarium.

Cara Pembuatan Herbarium

Pembuatan herbarium dimulai dengan mengumpulkan material herbarium yang diambil, terutama identifikasi dan dokumentasi. Dalam perjalanan identifikasi tanaman diperlukan ranting, daun, kuncup, kadang-kadang bunga dan buah dalam satu kesatuan. Material herbarium yang lengkap mengandung ranting daun muda dan tua, kuncup bunga, bunga tua dan muda yang sudah mekar, serta buah muda dan tua, material herbarium dengan bunga dan buah disebut herbarium fertil, sedangkan material herbarium tanpa bunga dan buah disebut material herbarium yang steril. Material herbarium harus lengkap, perlu diperhatikan pula pada saat pengambilan material herbarium harus dilakukan pula pencatatan data tumbuhannya, terutama karakteristik atau sifat yang hilang jika material tersebut diawetkan. Material herbarium tanpa catatan tumbuhan dianggap tidak berguna. Pengawetan dan pencatatan data tumbuhan dengan menggunakan buku catatan atau blangko isian (Rugayah et al., 2004).

Cara pembuatan herbarium adalah sediakan tumbuhan yang akan dibuat herbarium dan dipisahkan bagian-bagiannya. Siapkan kardus dan digunting dengan panjang 50 cm dan lebar 40 cm. Disusun dan diatur dengan rapi masing-masing bagian dan dilekatkan dengan selotip. Beberapa daun, bunga, akar atau batang yang tidak perlu ditampilkan dipotong. Diatur serapi dan sedetail mungkin. Setelah semua bagian tersusun rapi, lekatkan dan pipihkan keseluruhan dengan selotip. Ditulis nama tumbuhannya. Hasil herbarium disimpan ke dalam lemari tertutup rapat dalam bentuk kering. Herbarium siap untuk ditampilkan (Bengen dan Andrianto, 2001).

Materi dan Metode

Materi

Alat. Alat yang digunakan dalam praktikum herbarium antara lain kertas koran sebanyak 14 lembar, bambu ukuran 1 m dan lebar kurang lebih 3 cm sebanyak 10 buah, steples, lakban, selotip, tali rafia, gunting, lem, plastik bening, etiket tempel, etiket gantung, pensil dan kertas karton.

Bahan. Bahan-bahan yang digunakan dalam praktikum yaitu rumput dengan bagian tanaman yang lengkap (akar, batang, daun, bunga, dan buah atau biji) berupa tanaman rumput meksiko (Euchlaena mexicana).

Metode

Pra herbarium

Tanaman yang akan diawetkan diambil dari lingkungan sekitar dan dicatat lokasi dan tanggal pengambilannya. Tanaman diambil secara hati-hati agar keseluruhan bagian dari tanaman dapat ikut serta dan tidak rusak. Bambu yang telah dipotong menjadi beberapa bilah bambu, dirangkai menjadi bentuk jaring yang berfungsi sebagai penjepit tanaman. Koran digunakan untuk membantu penjepitan tanaman. Bambu, koran 14 lembar, dan tanaman dirangkai menjadi satu dengan urutan dari bawah keatas adalah bingkai bambu, kertas koran 7 lembar, tanaman yang akan diawetkan, kertas koran 7 lembar, dan teratas adalah bingkai bambu. Kedua bingkai bambu diikat dengan tali. Rangkaian disimpan dan dilakukan penjemuran selama 2 minggu atau 14 hari.

Herbarium

Tanaman yang telah kering dipindah ke kertas karton dan ditutup oleh plastik bening. Tanaman diberi etiket gantung dan etiket tempel yang terdiri dari taksonomi tanaman.

Hasil dan Pembahasan

Praktikum Ilmu Hijauan Makanan Ternak acara Herbarium bertujuan untuk mempelajari berbagai spesies tanaman dengan cara tanaman tersebut dimatikan dan diawetkan dengan metode pengeringan, dan untuk mempelajari taksonomi tumbuhan, mempelajari distribusi dan stabilitas nomenclature. Pengertian tersebut sesuai dengan pendapat Bridson dan Forman (1998), mengenai herbarium yaitu suatu koleksi tumbuhan atau bagian tumbuhan yang diawetkan, yang akan digunakan untuk mempelajari taksonomi tumbuhan, mempelajari distribusi dan stabilitas nomenclature. Tanaman yang digunakan pada praktikum ini adalah rumput meksiko atau Euchlaena mexicana yang bagian-bagian dalam rumput tersebut masih dalam keadaan utuh. Berikut ini merupakan klasifikasi rumput meksiko (Euchlaena mexicana)

Kingdom        : Plantae
Subkingdom : Tracheobionta
Division         : Magnoliophyta
Class              : Liliopsida
Subclass       : Commelinidae
Order              : Cyperales
Family                        : Poaceae
Species          : Euchlaena mexicana

(Anonim, 2015)

Rumput Meksiko berasal dari Negara Mexico serta Amerika Tengah. Rumput ini masuk ke Indonesia sejak tahun 1878 yang dibawa ke pulau Jawa. Rumput ini merupakan salah satu rumput unggul yang produksi per tahunnya dapat mencapai 120 ton atau sekitar 15 ton per hektar. Tanaman rumput meksiko mudah tumbuh diberbagai jenis tanah lembab dan subur dengan ketinggian hingga 1200 meter dpl. curah hujan sekitar 1000 mm/per tahun. Sedangkan pada musim kemarau rumput ini sulit tumbuh karena memang tidak tahan terhadap kekeringan (Anonim, 2015).

Ciri-ciri atau karakteristik dari rumput meksiko yaitu batang kaku dan tegak serta beruas pendek-pendek menyerupai tanaman jagung, tinggi tanaman dapat mencapai 5 meter, daun berwarna hijau dan kaku serta terkulai bila diraba terasa kasar (seperti berbulu), dan bunga berwarna kecoklatan berbentuk mayang seperti bunga jagung. Kandungan nutrisi dari rumput meksiko yaitu proteinnya cukup tinggi lebih tinggi dibanding rumput gajah yakni berkisar 8-13 %. Lemak kasar pada rumput meksiko sebesar 2,43% dan BETN sebesar 47,33% (Anonim, 2015).

Herbarium merupakan tempat penyimpanan contoh koleksi spesimen tanaman yang telah diawetkan dengan cara-cara khusus. Secara umum ada dua jenis herbarium, yaitu kering dan herbarium basah. Herbarium yang baik selalu disertai identitas pengumpul (nama pengumpul atau kolektor dan nomor koleksi) serta dilengkapi keterangan lokasi asal material dan keterangan tumbuhan tersebut dari lapangan. Material herbarium dengan bunga dan buah jauh lebih berharga disebut herbarium fertil, sedangkan material herbarium tanpa bunga dan buah disebut herbarium steril. Herbarium fertil lebih berharga karena terdapat bunga yang dapat mempermudah dalam identifikasi dengan didukung oleh data seperti jumlah mahkota, adanya putik atau benang sari. Untuk keperluan dokumentasi ilmiah dianjurkan agar dibuat material herbarium fertil. Material herbarium dari pohon berdiameter besar maupun kecil agar dipilih ranting yang berbunga dan berbuah. Apabila sulit dilakukan, cukup diambil ranting dengan daun-daun dan kuncup utuh dalam satu kesatuan (Onrizal, 2005).

Gambar 7.1 Material herbarium tanaman Euchlaena mexicana

Cara pembuatan herbarium yang dilakukan pada praktikum herbarium oleh kelompok XVIII adalah pembuatan herbarium dengan cara kering atau pengeringan, yaitu dengan cara mengeringkan seluruh bagian tumbuhan mulai dari akar, batang, dan daun dengan menggunakan kertas koran. Koran ini bertujuan sebagai penyerap air yang terkandung dalam tanaman segar tersebut. Kemudian cara yang dipakai adalah dengan melapisi tanaman segar dalam hal ini tanaman yang digunakan untuk pembuatan herbarium adalah rumput meksiko yang tergolong dalam Familia Poaceae Barnhart, Genus Euchlaena M, Species Euchlaena mexicana yang dilapisi dengan beberapa eksemplar koran yang selanjutnya ditekan dengan menggunakan beberapa batang bambu yang diikat menggunakan tali rafia lalu dilapis dengan kertas koran hingga rapat untuk meminimalisir udara masuk ke dalam. Apabila pressing kurang rapat, maka dimungkinkan tanaman yang akan dibuat herbarium akan terkena jamur dan bahkan dapat menyebabkan tanaman yang ada di dalam akan membusuk. Tinggi tanaman yang dipakai sekitar 60 cm. Daun berjenis helaian, tipe bunga spikelet, berwarna hijau kekuning – kuningan dengan terdapat warna ungu di tengah, kemampuan adaptasi tanaman ini sangat bagus, sehingga mampu tumbuh diberbagai kondisi tanah.

Gambar 7.2 Cara pembuatan herbarium tanaman Euchlaena mexicana

(Suyitno, 2004).

Tanaman rumput meksiko yang telah terbungkus koran dijemur selama 14 hari agar tanaman benar – benar kering dan dapat dikeluarkan dalam kondisi baik (tidak membusuk dan berjamur). Selama 14 hari tersebut, tanaman rumput meksiko yang terbungkus koran tersebut dijemur di bawah sinar matahari dan disimpan pada tempat yang tidak lembab. Tanaman yang telah kering dikeluarkan dari koran pembungkus, kemudian ditata pada kertas herbarium yang telah disediakan. Tanaman yang dipress ternyata tidak berjamur dan masih rapi seperti penataan pada saat proses pra herbarium. Tanaman ditempel pada kertas herbarium dan ditempel dengan perekat selotip. Herbarium yang telah jadi diberi etiket gantung dan etiket tempel yang ditulis dengan pensil supaya awet. Sesuai dengan pendapat Onrizal (2005), bahwa dianjurkan penulisan pada label gantung menggunakan pensil supaya tulisan awet dan tidak larut bila terkena siraman alkohol atau spirtus.

Membuat herbarium dilakukan dengan dua cara. Cara pertama diambil salah satu tanaman dengan bagian tanaman lengkap seperti terdapat akar, batang, daun dan bunga, masukkan tanaman kedalam sasak bambu yang telah dibuat dan keringkan tanaman dengan penjemuran cahaya matahari. Cara kedua diatur posisi tanaman pada lembaran koran hingga rata. Lapisi lagi dengan beberapa lembar koran. Tangkup dengan triplek pada kedua sisinya lalu diikat dengan kencang sehingga tanaman terpress dengan kuat. Selanjutnyan ganti koran dengan koran yang kering apabila koran pembungkus tanaman basah, lakukan berulang-ulang hingga tanaman benar-benar kering. Tanaman dikatakan kering jika sudah cukup kaku dan tidak terasa dingin. Tanaman yang akan dibuat herbarium, sebaiknya memiliki bagian-bagian yang lengkap. Jika bunganya mudah gugur maka masukkan bunga tersebut kedalam amplop dan diselipkan pada herbarium. Daun atau bagian tanaman yang terlalu panjang dapat dilipat untuk mempermudah pengaturan. Tempelkan tanaman yang telah dikeringkan pada karton dengan menggunakan jahitan tali atau selotip. Tanaman yang akan dibuat herbarium harus mempunyai kenampakan atas dan kenampakan bawah daun yang diperlihatkan. Lengkapi keterangan yang terdapat pada collector book dan selanjutnya adalah pasang etiketnya, etiket gantung maupun etiket tulis (Onrizal, 2005).

Etiket merupakan lembar isian yang menerangkan mengenai informasi tentang tanaman yang telah diletakkan dalam herbarium. Etiket tempel tersusun atas familia, genus, spesies, nama daerah pengambilan dan tanggal pengambilan yang diletakkan pada pojok kiri bawah kertas herbarium dan diberi etiket gantung dengan ukuran 3 cm x 7 cm ditulis kelompok/kode/tanggal pengambilan. Tanaman rumput meksiko tergolong dalam Familia Poaceae Barnhart, Genus Euchlaena M, Species Euchlaena mexicana. Lokasi pengambilan di Lahan Koleksi Laboratorium Hijauan Makanan Ternak dan Pastura Fakultas Peternakan UGM,

Sleman, Yogyakarta. Tanggal pengambilan 1 Maret 2015 serta pembuatannya pada tanggal 14 Maret 2015. Etiket gantung ditulis XVIII/EM/01032015 dan digantung pada batang tanaman rumput meksiko menggunakan tali rafia. Kemudian tanaman ditutup dengan menggunakan plastik bening untuk melindunginya dari serangga atau kotoran. Herbarium sederhana selesai dibuat dan siap dikoleksi untuk disimpan sebagai arsip dan penyimpanan data, dan dapat diambil kembali apabila suatu waktu herbarium tersebut dibutuhkan untuk bahan ajar, referensi dan kepentingan lainnya. Menurut Onrizal (2005), label gantung dituliskan kode (singkatan nama) kolektor (pengumpul), nomor koleksi, nama lokal (daerah) tumbuhan yang dikumpulkan, lokasi pengumpulan, dan tanggal. Label yang ditempel atau untuk specimen penulisannya juga seperti label gantung. Etiket atau label yang digantung pada herbarium sudah sesuai dengan literatur.

Manfaat herbarium antara lain mengidentifikasi tumbuhan yang bersangkutan, mempelajari hubungan kekerabatannya dengan tumbuhan lain sehingga dapat disusun klasifikasinya, merupakan tampat penyimpanan material dan data tanaman, dapat digunakan sebagai bahan untuk mengajar dan menganalisis, dan sebagai referensi dalam meneliti atau mempelajari hal-hal yang berhubungan dengan botani. Mengungkapkan kegunaan herbarium adalah sebagai kelengkapan koleksi untuk kepentingan penelitian dan identifikasi, hal ini dimungkinkan karena pendokumentasian tanaman dengan cara diawetkan dapat bertahan lebih lama, kegunaan herbarium lainnya yaitu sebagai material peraga pelajaran botani, material penelitian alat pembantu identifikasi tanaman, material pertukaran antar herbarium di seluruh dunia, bukti keanekaragaman spesimen acuan untuk publikasi spesies baru.

Kesimpulan

Hasil yang diperoleh menyimpulkan bahwa herbarium merupakan suatu bahan yang digunakan untuk studi taksonomi tanaman yang dapat berupa tumbuhan segar atau yang telah diawetkan dengan metode tertentu. Rumput meksiko tergolong ke dalam Familia Poaceae Barnhart, Genus Euchlaena M, Species Euchlaena mexicana. Herbarium bermanfaat untuk mengidentifikasi tumbuhan yang bersangkutan, mempelajari hubungan kekerabatannya dengan tumbuhan lain sehingga dapat disusun klasifikasinya, merupakan tampat penyimpanan material dan data tanaman, sebagai bahan untuk mengajar dan menganalisis, dan sebagai referensi dalam meneliti atau mempelajari hal-hal yang berhubungan dengan botani. Proses pembuatan herbarium ada enam tahap, yakni pengambilan tanaman dengan bagian-bagaian lengkap (daun, bunga, buah, batang, dan akar), pengeringan dengan menggunakan koran dan bambu serta tali rafia, penempelan tanamaan dengan selotip kemudian diberi etiket gantung dan etiket tempel serta plastik bening.

Daftar Pustaka

Anonim. 2015. Species: Euchlaena mexicana schrad. Available at http://luirig.altervista.org/biology/main.php?taxon=Euchlaena+mexicana accession date 17 Mei 2015.

Bengen, D.G dan Adrianto. 2001. Pengenalan dan Pengelolaan Ekosistem Mangrove Pusat kajian Pesisir dan Lautan. Institut Pertanian Bogor. Bogor.

Bridson, D. And L. Forman. 1998. The Herbarium Handbook. 3^rd Edition.Royal Botanic Gardens, Kew.

Onrizal. 2005. Teknik Pembuatan Herbarium. E-USU Repository. Universitas Sumatra Utara. Sumatra Utara.

Rugayah, Retnowati, A., Windadri, F.I., dan A. Hidayat. 2004. Pengumpulan Data Taksonomi. Dalam Rugayah, Widjawa, E.A.,Dan Praptiwi (Penyunting). Pedoman Pengumpulan DataKenaekaragaman Flora. Pusat Penelitian Biologi-Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia.

Rugayah, R.A., Windadri F.I., dan A. Hidayat. 2004. Pengumpulan Data Taksonomi. Dalam Rugayah, Widjawa E.A., dan Praptiwi (Penyunting). Pedoman Pengumpulan Data Kenaekaragaman Flora. Pusat Penelitian Biologi-Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia.

Sutrisna, U. T. kalima Dan Purnadjaja. 1998. N Wuliyani-Soejipto dan Soekotjo (penyunting). Pedoman Pengenalan Pohon Hutan di Indonesia Yayasan ROSA Bogor dan pusat Diklat Pegawai Dan SDM Kehutanan. Bogor.

Suyitno, A.L.2004. Penyiapan Specimen Awetan Objek Biologi. Jurusan Biologi FMIPA UNY. Yogyakarta.

Syamsuri, I. 2006. IPA Biologi. Erlangga. Jakarta.

Tjtrosoepomo, G. 2005. Taksonomi Tumbuhan. Gadjah Mada University Press, Yogyakarta.

LAMPIRAN

Laporan Praktikum Ilmu Hijauan Makanan Ternak Gabungan

You may also like...

Leave a Reply Cancel reply

Daftar Kategori

Recent Posts

Archives

Laporan Praktikum Ilmu Hijauan Makanan Ternak Gabungan

You may also like...

Laporan Praktikum Ilmu Reproduksi Ternak Acara Anatomi Jantan

Laporan Praktikum Manajemen Pastura Acara Penanaman dan Pemupukan

Penyamakan Kulit

Leave a Reply Cancel reply

Daftar Kategori

Recent Posts

Archives